Каллюс у растений это ткань

КАЛЛЮС — каллус (от лат. callus толстая кожа, мозоль), ткань, образующаяся у растений на месте поранений и способствующая их заживлению. Состоит из б. или м. однородных паренхимных клеток, начало к рым даёт раневая меристема. Элементы К. мало… … Биологический энциклопедический словарь

каллюс — Растительная ткань, образующаяся на поверхности ран и состоящая из недифференцированных клеток. [ГОСТ Р 52681 2006] Тематики виноградарство Обобщающие термины размножение … Справочник технического переводчика

каллюс — (каллус) (от лат. callus мозоль), ткань, образующаяся у растений в местах повреждений в виде наплыва и способствующая их заживлению. * * * КАЛЛЮС КАЛЛЮС (каллус) (от лат. callus мозоль), ткань, возникающая из раневой меристемы (см. МЕРИСТЕМА) в… … Энциклопедический словарь

каллюс — каллус ( лат. callus толстая кожа, мозоль) 1) бот. новообразование у растений в местах поранений (или повреждений паразитами), способствующее заживлению ран; 2) мед. костная мозоль, образующаяся после сращения перелома кости; мозоль, уплотнение … Словарь иностранных слов русского языка

каллюс — callus каллюс. Группа дедифференцированных растительных клеток, возникающая в зонах тканевых ран или в условиях культивирования тканей (клеток) in vitro в присутствии веществ типа ауксинов ; из культуры К. могут быть регенерированы… … Молекулярная биология и генетика. Толковый словарь.

каллюс — kalius statusas T sritis augalininkystė apibrėžtis Antrinės meristemos masė, natūraliomis sąlygomis aptraukianti pažeistas augalų vietas ir padedanti joms užgyti, taip pat susidaranti dirbtinai auginant izoliuotas augalo ląsteles ar audinius in… … Žemės ūkio augalų selekcijos ir sėklininkystės terminų žodynas

КАЛЛЮС — (каллус) (от лат. callus мозоль), ткань, образующаяся у р ний в местах повреждений в виде наплыва и способствующая их заживлению … Естествознание. Энциклопедический словарь

каллюс — совокупность тонкостенных паренхимных клеток, возникающих в зоне травмирования органов растения. В К. закладываются апикальные меристемы побегов и (или) корней. К. образуется в виде валика или аморфной массы в местах надрезов, на срезах черенков … Анатомия и морфология растений

КАЛЛЮС

Смотреть что такое «КАЛЛЮС» в других словарях:

каллюс — мозоль, нарост, каллус Словарь русских синонимов. каллюс сущ., кол во синонимов: 3 • каллус (1) • мозоль … Словарь синонимов

КАЛЛЮС — (каллус) (от лат. callus мозоль) ткань, образующаяся у растений в местах повреждений в виде наплыва и способствующая их заживлению … Большой Энциклопедический словарь

Каллюс — каллус (от лат. callus толстая кожа, мозоль), 1) ткань, образующаяся у растений на поверхности поранения (трещинах, надрезах, в основании черенков, в местах срастания подвоя и привоя при прививках) и способствующая заживлению ран. Состоит … Большая советская энциклопедия

что такое каллусные ткани

Каллусная ткань представляет собой неорганизованную массу делящихся клеток. Индуцированный каллус, как правило, гетерогенен и состоит из разнообразных типов и групп клеток, которые отличаются своими размерами. Каллусные культуры используют у ряда растений с целью получения в культивируемых условиях необходимых биопродуцентов, что осуществляют в промышленных условиях, а при индукции в каллусной ткани проростков — для размножения исходного растения — донора или получения сомаклонов.

Каллус, что означает «мозоль» , может образоваться как на изолированных кусочках ткани (эксплантах) in vitro, так и на растении при поранении.

Каллусную ткань in vitro в основном бывает белого или желтоватого, реже светло-зеленого цвета. Очень редко она может иметь интенсивную зеленую окраску (у мандрагоры) . Темно-коричневая окраска возникает чаще при старении каллусных клеток и связана с накоплением в них фенолов. Последние окисляются в хиноны. Для избавления от них в питательные среды вносят антиоксиданты.

Каллусная ткань аморфна и не имеет конкретной анатомической структуры, но в зависимости от происхождения и условий выращивания она может быть разной консистенции: 1) рыхлой, состоящей из сильно оводненных клеток, легко распадающейся на отдельные мелкие агрегаты; 2) средней плотности, с хорошо выраженными меристематическими очагами; 3) плотной, в которой дифференцируются элементы камбия и проводящей системы.

В результате выхода из-под контроля организма рост каллусных клеток происходит неорганизованно, асинхронно, и является неограниченным. При пересадках на свежую питательную среду культура каллусной ткани моркови, полученная Р. Готре более 60 лет назад, до сих пор растет в коллекции.

Длительное время считали, что каллусные клетки генетически строго однородны. Однако в 60-х годах было выяснено, что клетки каллусной ткани обладают выраженной генетической гетерогенностью.

Для селекционера каллус представляет интерес прежде всего из-за довольно высокой генетической вариабельности его клеток. Установлено, что плоидность каллусных клеток значительно варьирует и особенно при их длительном культивировании. При этом образуются полиплоидные, анеуплоидные и другие генетически измененные клетки.

Цитологический анализ, показал, что в 45-дневном каллусе растений малины сорта Карнавал встречаются клетки с числом хромосом: 7.13,14,15,16, т. е. наблюдается широкое варьирование по числу хромосом. В норме соматические клетки изучаемых растений малины содержат 2п (2х) = 14 хромосом. Следовательно, при регенерации из каллусной ткани могут возникнуть растения, отличающиеся от исходных родительских форм, что будет способствовать увеличению спектра генетической изменчивости для селекции.

Образования каллуса на экспланте в стерильной культуре часто происходит спонтанно. Однако интенсивность формирования каллусной ткани на агаризованной среде можно стимулировать добавлением ряда веществ, относящихся к различным группам ФАВ. Отмечено, что каллусообразованию способствует относительно высокое содержание в среде ауксинов или их сочетание с низкой концентрацией цитокининов.

Читайте также: Злокачественная опухоль мягких тканей желудка

Культуру каллуса можно получить из различных органов (листьев, побегов, корней) растений разных видов,

Исходный эксплант для получения каллуса представляет собой фрагмент ткани или органа, инкубируемой самостоятельно или используемой для получения первичного каллуса. Для этих целей более пригодны ткани молодых листьев, т. к. образование каллуса происходит интенсивнее.

В биотехнологии каллусом называют недифференцированные клетки, являющиеся тотипотентными и способными поэтому дать начало целому растению. Являются объектом генетической инженерии. В биологии растений каллусом называют также клетки, образующиеся на раневой поверхности растения в виде опробковевающей ткани, которая возникает в результате деления пограничных с раной клеток [1].
Каллусная ткань способствует зарастанию ран, срастанию прививок и т. д.

Экология СПРАВОЧНИК

Информация

Каллюс

Каллюс у растений образуется вокруг места срезов или повреждений. Разрастаясь, он закрывает рану и служит таким образом для заживления ран и предохранения от загнивания. Новые корни у черенков появляются из каллюса или выше его, из стебля. Черенки разных растений укореняются с различной скоростью. Некоторые растения (колеус, фуксия,традесканция)укореняются быстро, в течение 5-7 дней, другие же (большинство хвойных) требуют для укоренения нескольких месяцев. Большинство растений укореняется в течение двух-трех недель.[ . ]

Процессы каллюсо- и кор-необразования на черенках тесно связаны с их размерами. Чрезмерное увеличение длины черенка уменьшает коэффициент размножения. Слишком большие черенки имеют много листьев, которые испаряют значительное количество влаги, снижая оводненность тканей всех органов черенка (стебля, почек), что ухудшает укоренение. Черенки слишком малого размера (2—3 см) медленно укореняются, слабо развиваются. Технологически обоснован черенок длиной 15—25 см. Нижнюю часть черенка (1,5—3 см) заглубляют в субстрат, остальная часть, несущая листья, обеспечивает процесс регенерации.[ . ]

Культура каллюса. Культура каллюса включает индуцирование и рост тканей каллюса и дифференциацию органов, что в конечном итоге должно привести к образованию вполне развитого растения. На первом этапе у растений стимулируется недифференцированный рост, или образование каллюса. Эти относительно равного диаметра и быстро делящиеся клетки обычно возникают в результате активного деления клеток на поверхности среза, но могут происходить и от единичных клеток. Недавно даже у пыльцевых зерен было вызвано придаточное образование тканей каллюса. Переход от роста к дифференциации органов у каллюса можно вызвать изменением среды после образования предельной массы его тканей. Во многих случаях критическим фактором является концентрация и баланс ауксина и цитокинина (см. гл. 4). Высокий уровень ауксина стимулирует возникновение зачатков корней, а высокий уровень цитокинина — побегов.[ . ]

После образования каллюса ежедневно утром и вечером для притока свежего воздуха на 20-30 минут стакан или банку устанавливают на палочку толщиной в палец. С появлением первых корешков укрытие снимают вечером на 1-2 часа. С образованием корней покрышку совсем снимают.[ . ]

В обоих случаях цитокинины не могут быть заменены другими пуринами, пиримидинами, аминокислотами, ауксинами и гиббереллинами. Помимо цитокининов активность была обнаружена только у дифенилмочевины [8]. Однако нет гарантии, что в растениях не существуют какие-то вещества, которые окажутся активными по отношению к этим тестам.[ . ]

Наиболее благоприятна для образования каллюса температура 27—29° С. При зимних прививках, когда компоненты находятся в состоянии покоя, законченные прививки лучше всего хранить в течение одной-двух недель в теплых и влажных условиях, чтобы стимулировать образование каллюса.[ . ]

Прямая пропорциональность между сырым весом каллюса и концентрацией кинетина сохраняется в пределах от 0,004 до 10 мг!л этого вещества, что соответственно равно 0,2—500 мкг кинетина на пробу.[ . ]

В качестве слабых сторон тестов на цитокинины с каллюсами следует отметить два момента: длительность времени, нужного для количественной оценки кининовой активности, и необходимость стерильных условий работы. Содержание питательных элементов (в мг!л среды) для культивирования изолированных тканей стебля табака и каллюса семядолей сои следующее [8].[ . ]

Как показали эксперименты с тканевыми культурами каллюса табака, фитохромная система может оказывать некоторое влияние па размножение вируса кольцевой пятнистости табака [1419]. Ежедневное воздействие на зараженные культуры красного света в течение 5 мин, проводимое на протяжении 2 нед, повышало содержание вируса на 50 % по сравнению с культурами, выращиваемыми в темноте. Дополнительное ежедневное воздействие красного света в течение 5 мин предотвращало это повышение содержания вируса в тканях. Облучение растений синим светом как до, Taxi и после инокуляции приводило к повышению содержания Z-вируса картофеля в тканях зараженных растений N. tabacum и вируса мозаики люцерны — в тканях N. clevelandii [335]. На основе экспериментов по влиянию распыленных растворов сахаров на листья сахарной свеклы было высказано предположение, что воздействие света на проявление симптомов желтухи сахарной свеклы связано с изменением содержания углеводов в зараженных листьях [1871]. Симптомы заболевания были более отчетливо выражены у растений, листья которых ежедневно опрыскивали 10%-ным раствором сахарозы. Высокая интенсивность света нодавляет образование опухолей на стеблях и корнях растений какао, зараженных вирусом деформации побегов дерева какао [38]. В Гане, где деревья какао часто бывают затенены другими высокими деревьями, болезнь эта проявляется в общем значительно сильнее, чем в Нигерии, где деревья какао получают больше света.[ . ]

Кассашгс и Тинсли [951] сообщают об освобождении культуры каллюс-ной ткани табака от У-вируса картофеля путем добавления к питательной среде 2-тиоурацила (в концентрации 2 мкг/мл). Добиться регенерации растений картофеля из безвирусной каллюсной ткани не удалось.[ . ]

Некоторым растениям, например винограду, для образования каллюса необходим кислород. Такие растения не следует обмазывать садовым варом, чтобы не препятствовать доступу кислорода.[ . ]

Существует несколько модификаций биотеста на цитокинины, основанного на стимуляции ими роста каллюса в изолированной стерильной культуре. Стерильность дает этому тесту большое преимущество, так как исключает побочное влияние микроорганизмов. Вместе с тем необходимость стерильных условий ограничивает широту его применения. Используют общие положения работы со стерильной культурой тканей, которые подробно изложены в монографии Бутенко [12].[ . ]

По некоторым данным, красный свет эффективнее, чем белый.[ . ]

Процесс выделения еловой живицы непосредственно из ранения называется первичным смоловыделением, а из каллюса — вторичным. Такое выделение может продолжаться довольно долго, до тех пор пока не зарастет рана. Особенностью смолоносной системы ели является уменьшение густоты смоляных ходов с высотой ствола, причём на южной стороне в нижней и средней частях ствола смоляных ходов значительно больше, чем на северной.[ . ]

Вместо сердцевины стебля табака ряд авторов при определении кининов используют в качестве тест-объекта стеблевой каллюс табака [8]. Однако для этой цели подходят не все сорта табака. Хорошие результаты получены в лаборатории Скуга [8] с каллюсом табака Висконсин 38, тогда как некоторые сорта образуют каллюс, который хорошо растет и в отсутствие цитокининов.[ . ]

При поранении корней вяз дает иногда корневые отпрыски. После срубки на пнях между корой и камбием образуются валики каллюса, в котором закладываются придаточные почки, развивающиеся в поросль. Помимо этой (адвентивной) поросли, вяз дает и превентивную (из спящих почек).[ . ]

Наряду с опрыскиванием нужно и проветривание. Систематически проветривать начинают только с появлением на черенках каллюса, до этого проветривание считается достаточным во время снятия покрышки при опрыскивании растений.[ . ]

Срастание компонентов является основой прививки. Совершается оно перемешиванием и смыканием тканей каллюса, образующегося из камбия подвоя и привоя как реакция на поранение. Камбий — меристематическая ткань между ксилемой (древесина) и флоэмой(кора) — у многолетних древесных двудольных растений тянется непрерывно. Однодольные растения с рассеянным камбием не могут быть привиты. Ткани каллюса состоят из паренхимных клеток. Под влиянием имеющегося в наличии камбия ткани каллюса дифференцируют новые камбиальные клетки. Этот новый камбий, в свою очередь, вызывает дифференциацию ксилемы и флоэмы для восстановления сосудистой связи между подвоем и привоем (рис. 124). Основой техники прививки является создание тесного контакта между камбиальными тканями подвоя и привоя с тем, чтобы образующиеся у них ткани каллюса срастались и создавали прочную связь. Часто упругость привоя или подвоя используется для выполнения прививки в расщеп. Чтобы обеснечить более плотное прилегание компонентов, применяют обвязку тесьмой, резиновой лентой или закрепление гвоздями. Различные виды окулировки и прививки изображены на рисунках 125 и 126. Естественные прививки образуются в результате тесного переплетения корней или стеблей.[ . ]

Читайте также: Ткань для обтяжки дивана как называется

Черенки укореняются лучше при рассеянном свете, который создают притенением их бумагой или занавеской. Притенение уменьшают с появлением каллюса и удаляют полностью после образования корней. Легкое притенение в солнечные дни нужно и для укорененных растений, не выдерживающих прямых солнечных лучей (гортензия, прогула и др.). Укоренившиеся черенки не следует долго держать в песке, так как появившиеся на них молодые побеги от недостатка питания начинают деревенеть, а из-за недостатка света — вытягиваться, поэтому их следует высаживать в горшки с землей, наиболее отвечающей требованиям растения.[ . ]

Растительные клетки можно выращивать в культуре несколькими способами: выращивают либо целые органы (например, корни или верхушки стеблей), либо ткань каллюса, либо, наконец, клеточные суспензии. Все эти способы были испробованы при изучении репликации вирусов, однако результаты оказались неутешительными (если не считать некоторых микроскопических исследований). Количество вируса, продуцируемого в культуре ткани, обычно намного ниже, чем в интактных зеленых листьях.[ . ]

В условиях культурных плантаций применяют низкую резку, оставляя пенек высотой 2. 3 см. Новые придаточные почки закладываются в разросшейся возле среза защитной ткани — каллюсе. Здесь же нередко вырастают и придаточные корни. Недостатком низкой резки является то, что развивающийся побег прикрепляется к материнскому черенку сбоку и легко обламывается.[ . ]

Широкие перспективы для применения в садоводстве имеют стимуляторы и ингибиторы роста растений. Так, например, кинетин (6-фурфуриламинопурин) активирует клеточное деление и, по-видимому, стимулирует образование каллюса. Способность гиббереллинов стимулировать рост используется для увеличения размера сельдерея. Не меньшее значение имеют вещества, подавляющие или задерживающие рост. Использование гидразида малеино-вой кислоты для замедления роста дерна с целью сократить частоту скашиваний не нашло практического применения, но стимулировало поиски других веществ подобного действия.[ . ]

В отличие от сосны у ели хорошо развит смоляной аппарат коры. Основная масса живицы выделяется из мест соприкосновения обнажённой древесины с корой при нанесении подсочных ранений. В результате ранений во вновь образующейся древесине наплыва (каллюсе) возникает большое количество патологических смоляных ходов, превышающее в 2-3 раза обычное количество смоляных ходов в древесине. У основания каллюса образуется особый слой выделительных (железистых) клеток. Он располагается на внутренней плоской стороне каллюса и «подстилает» его на поверхности ранения.[ . ]

Упакованные прививки переносят в стратификационную камеру. Оптимальная температура для срастания 20—25°С. Влажность воздуха поддерживают на уровне 85% и выше. В таких условиях прививки выдерживают 10—17 дней. Как только компоненты срастутся (образуется каллюс в месте прививки) и начнут формировать мелкие белые корешки на корнях, прививки переносят в помещение с температурой минус 1—0°С, чтобы предупредить прорастание почек на черенке. В таких условиях их хранят до посадки на первое поле школы саженцев. Очень важно поддерживать в» заданных параметрах температурный режим, так как при ее повышении до 3°С усиливаются ростовые процессы, а при снижении до минус 6°С повреждается каллюс. При подсыхании опилок их увлажняют. После стратификации прививки можно также хранить в снежнщх буртах.[ . ]

Корневые черенки и отрезки стволиков (диффенба-хии, драцен и др.) сажают в рыхлую садовую землю с примесью песка так, чтобы только верхние концы оставались непокрытыми землей. Появлению корней у черенка предшествует образование на нижнем срезе черенка особого наплыва ткани — каллюса.[ . ]

Придаточные корни и побеги могут возникать из различных тканей. Например, у узамбарской фиалки корни на листовых черенках возникают из клеток, расположенных между сосудистыми пучками, а побеги — из клеток эпидермиса или коры. У батата корни и побеги могут образоваться из тканей каллюса на поверхности среза.[ . ]

В принципе суспензии живых, но не делящихся клеток обеспечивают экспериментатору ряд преимуществ при изучении репликации вирусов; однако на практике действительно эффективной системы такого рода до сих пор предложено не было. Можно использовать также разобщенные клетки из ткани каллюса, растущие в культуре, или клетки листьев, разделенные ферментативной обработкой [1972]. Включение радиоактивных предшественников в ВТМ исследовалось на группах клеток из листьев [300]. С этой целыо инфицированные листья измельчали при контролируемых условиях так, чтобы от 30 до 50% клеток оставались интактными. В этих гомогенатах синтезировался меченый вирус. Изменения, вызываемые в клетках гомогенизацией, вероятно, довольно серьезны, однако они не были изучены.[ . ]

В отсутствие цитокининов каллюсообразования у сердцевины стебля табака практически не происходит. Оно начинается только в пробах, содержащих цитокинин. Обнаружить начало процесса под микроскопом можно уже через 2—4 дня, однако обычно о действии цитокининов судят по приросту сырого и сухого веса каллюса через 4—5 недель с момента посадки. Для определения веса каллюс переносят из колбы в бюкс и взвешивают, чтобы узнать его сырой вес. Затем его доводят в термостате при 105° до постоянного веса и определяют сухой вес. В определенном пределе концентраций обнаруживается линейная зависимость между весом каллюса и концентрацией цитокинина. При более низких концентрациях действие цитокинина не проявляется, а при более высоких — может наблюдаться снижение эффекта. Абсолютные значения стимулирующих концентраций меняются в зависимости от взятого цитокинина.[ . ]

Ауксины и гиббереллины могут при некоторых условиях стимулировать деление клеток, однако вх скорее можно назвать гормонами, регулирующими рост растяжением. Было показало, что клетки каллюса в стерильной культуре через определенный промежуток времени прекращают деление. Однако при добавлении к питательной среде производных ДНК, получающихся после ее авто-клавнрования, деление клеток возобвовляется.[ . ]

Каждому практически опытному садоводу известно, что кольцевание ветви какого-либо древесного растения ведет к тому, что выше снятия кольца коры с ветви при достаточной защите места операции сырым мохом, песком или землей для более скорого заживления и сращения разъединенной коры, на всей длине ветви развиваются плодовые почки, а в месте снятия коры появляется каллюс и в большинстве развиваются корни, из чего вытекает заключение, что сделанный таким образом отводок должен иметь в себе уже зачатки к развитию плодовых деталей, что в свою очередь при повторении в нескольких генерациях отводков от отводков ведет к достижению ускорения плодоношения гибридом.[ . ]

Культура тканей представляет собой стерильный рост тканей или органов в искусственной среде. Хотя культура тканей долгое время была уделом физиологов, но в последнее время эта техника все больше используется как способ размножения растений. Существуют два типа размножения растений культурой тканей (называемой также микрокультурой): культурой меристем и культурой каллюса.[ . ]

Массовым видом огневого ранения при низовых пожарах являются травмы в виде опалов коры и поражения под нею камбия в нижней части стволов. Наружный опал (нагар, обгар) коры часто свидетельствует и о поражении камбия. В результате образуется так называемая пожарная подсушин а. Удалив кору, можно точно установить наличие и размер ранения. На краях скрытой корою подсушины (рис. 7) формируется каллюс и ранение начинает зарастать, при этом опадение коры на месте подсушины ускоряется и последняя обнажается, но не полностью, так как к этому времени края ее уже скрыты послепожарными отложениями прироста. Такие деревья с пожарными подсушинами в некоторых районах на севере! называют образно «пологрудыми».[ . ]

Читайте также: Муслин что можно сшить из ткани

У черенков привоя и подвоя, заготовленных с молодых, активно растущих побегов с интенсивно фотосинтезирующим листом, срастание и укоренение проходит одновременно и продолжается около 3 недель. Визуальные наблюдения и анатомические исследования привитой вишни показали, что через неделю после посадки в зоне прививки после отмирания поврежденных тканей возникают меристематические очаги, в зоне корнеобразования появляется каллюс. Через 2 недели в месте прививки образуются слои новых клеток, в базальной части подвоя появляются корни. В конце 3-й недели в зоне срастания формируется проводящая система.[ . ]

Перед посадкой черенки кильчуют в парниках, траншеях. Вниз набивают снег или лед, на который устанавливают решетку, а на нее — верхними концами черенки. Нижним концам создают температуру до +30° С. Черенки укрывают песком, слоем 2—3 см, а затем перегнойной землей — 3—4 см. Парники закрывают стеклянной рамой, а на ночь — матами. Черенки поливают водой, подогретой до +45. +50° С. Через 2—3 недели на нижних концах появляются белые бугорки каллюса (наплыва) и зачатки корней, а нижние почки, которые находились возле льда и снега, не распускаются. Под каждой рамой парника (106 х 160 см) размещают 4—5 тыс. черенков.[ . ]

В каллтосшлх культурах зараженных тканей концентрация вируса обычно значительно ниже, чем в интактных тканях растений. Вирус был обнаружен лишь примерно в 40% всех проверенных клеток. Удалось подтвердить и другим путем, что некоторые клетки действительно не содержали вируса: часть выращенных из каллюса растений табака оказалась свободной от вируса.[ . ]

В зараженных ВЯ?МТ листьях китайской капусты, взятых для исследования через 12—20 дней после заражения, увеличение содержания вирусного фосфора сопровождалось соответствующим снижением содержания нерастворимого невирусного фосфора (фиг. 43). Это наводит на мысль о том, что вирус использует (не обязательно непосредственно) часть запасов нерастворимого фосфата листьев. При устоявшейся инфекции ВЖМТ может содержать около 20% общего фосфора листа. В листьях N. glutinosa и в ткани каллюса N. tabacum, зараженных ВТМ, наблюдалось изменение концентрации некоторых нуклеотидов¿[1707—1709].[ . ]

Кора — это участок между сосудистой системой и эпидермисом. Она образуется из первичных тканей, преимущественно из паренхимы. В старых одревесневших стеблях образование пробковых тканей в коре с последующим отмиранием наружних слоев стирает признаки обособления коры. Пробковая ткань начинает формироваться, когда достигшая полного развития ткань становится мери-стематической и образует клетки с опробковевшими стенками. Этот защитный пробковый слой известен как перидерма. Каллюс, образующийся в ответ на ранение тканей, также может стать опробковевшим. Пробковая промышленность основывается на использовании такой ткани, образующейся в больших количествах у пробкового дуба (Quercus súber).[ . ]

Скорость зарастания ран составляет примерно 1 см диаметра в год, Поэтому для предупреждения загнивания древесины все раны диаметром более 1 см замазывают садовым варом. Хороший садовый вар легко наносится на раны при пониженной температуре, xopou.ro прилипает к свежим срезам, в течение длительного времени не высыхает и сохраняет эластичность, не растрескивается на морозе, в жаркую погоду не растапливается и не стекает, не ожигает ткани коры и камбия. Желательно, чтобы он стимулировал образование каллюса и зарастание ран, поэтому часто в него добавляют ростовые вещества.[ . ]

Соотношение температур субстрата и воздуха должно изменяться в зависимости от фазы укоренения черенков. В первую фазу корнеобразова-ния, когда формируются зачатки корней в тканях черенка, температура субстрата должна быть на 2—3°С выше, чем температура окружающего воздуха. Это активизирует физиологические процессы в нижней части черенка за счет оттока пластических веществ из верхней части к месту корнеобра-зования. Наблюдается быстрое утолщение нижней части черенка в результате активного деления клеток, ткани коры приобретают беловатый оттенок, на срезе по камбиальному кольцу образуется каллюс.[ . ]

Аномальные митозы и мейозы можно вызывать с помощью различных механических воздействий, в том числе и декапита-цией, т. е. удалением верхушек побега. Опыты Винклера (1916) по искусственному образованию полиплоидных форм методом прививок весьма интересны, поскольку на полученных им тет-раплоидах удалось показать, что различия в числе хромосом приводят к морфологическим изменениям. Причиной возникновения полиплоидов в опытах этого ученого были не прививки, ■а поранения растений, стимулирующие митотическое деление. Регенерация, т. е. восстановление утраченных или поврежденных органов и тканей, а также восстановление целого организма из отдельных тканей, происходящая за счет каллюса рубцевания, иногда приводит к образованию некоторого числа тетраплоидных побегов; именно поэтому декапитацию широко применяют у растений, способных к регенерации. Этот метод особенно эффективен для некоторых пасленовых, например, томатов.[ . ]

С ростовыми корреляциями тесно связана способность растительных организмов к регенерации, или восстановлению утраченных частей. Высшее проявление регенерационной способности растений проявляется при культуре изолированных клеток и тканей. Однако в этом случае для регенерационных процессов нужны особые стерильные условия, специальная питательная среда и определенное соотношение гормональных веществ, внесенных извне. Несколько иное положение наблюдается при черенковапии растений. В этом случае регенерационные процессы не требуют особых условий. Регенераци-оппая деятельность при черенковании начинается с усиленного деления клеток на месте среза, в результате чего образуется наплыв — каллюс. Особенно энергично деление клеток происходит вблизи ситовидных трубок. Затем клетки каллюса дифференцируются, закладываются точки роста и развиваются придаточные корпи. Для развития стеблевого побега необходимо наличие почки. На черенках очень сильно проявляется влияние полярности. Каллюс образуется только па лижпем конце черенка. По-видимому, полярность связана « распределением гормонов, так как с помощью ауксина можно вызвать образование каллюса ва морфологически верхнем конце черенка. Черенки сохраняют на себе отпечаток возраста растительного организма, от которого они отделены. Так, черенки, взятые с цветущего растения, раньше образуют цветочные зачатки. Способность растений к регенерации широко используется в практике растениеводства при вегетативном размножении растений.[ . ]

Методы выращивания изолированных тканей были разработаны Ф. Уайтом и Р. Готре. Сущность метода заключается в том, что выделенные кусочки ткани или отдельные клетки выращивают на искусственной питательной среде в стерильных условиях. Если полностью дифференцированную клетку изолировать, то в стерильпых условиях на соответствующей питательной среде она снова начинает делиться и затем из нее может развиться целый растительный организм. Так из одной, полностью дифференцированной клетки флоэмы, выделенной из корнеплода моркови или из клетки сердцевинной паренхимы табака, можно получить целое, полностью развившееся растение. В опытах советского физиолога Р. Г. Бутенко с клетками флоэмы моркови при выращивании на питательной среде в стерильных условиях сначала удалось заставить их делиться и получить недифференцированную массу клеток — каллюс. Затем в этой массе клеток возникли очаги дифференциации. Процесс вторичной дифференциации можно разделить на две фазы, первая фаза — ью образование в массе однородных клеток очагов регенерационной меристемы и возникновение зародышевых структур, которые напоминают настоящие и имеют зачаточную почечку и зачаточный корешок. Для того чтобы зародышевые структуры появились, необходимо добавление фитогормонов цдтокининов. На второй фазе происходит рост этих зародышевых структур, но для этого необходимо добавить в питательную среду ауксины. При этом в зависимости от соотношения ауксинов и цитокининов происходит преимущественный рост тех или ниых органов.[ . ]

Свежие записи
- Балкон в многоквартирном доме: является ли он общедомовым имуществом?
- Штраф за остекление балкона в 2022: что это и как избежать наказания
- Штраф за мусор с балкона: сколько заплатить за выбрасывание окурков
- Оформление балконного окна: выбираем шторы из органзы
- Как выбрать идеальные шторы для маленькой кухни с балконом