Каллусная ткань представляет собой легко доступный материал, который наиболее часто используют для клеточной селекции. Как правило, работу проводят на первичной или пересадочной каллусной ткани, которая не утрачивает способности к регенерации на протяжении ряда субкультивирований.
Однако при работе с каллусными культурами многие исследователи отмечают существенные недостатки данного объекта: медленный рост ткани, неравноценное для всех клеток действие токсических веществ, которые применяются в качестве селективного фактора, а также потеря регенерационной способности в процессе культивирования каллусных клеток. Несомненно, проводить селекцию целесообразно на уровне одиночных клеток (суспензионная культура, протопласты). Однако для многих видов растений не разработаны эффективные технологии и способы культивирования одиночных клеток. Поэтому, несмотря на перечисленные выше недостатки использования каллусных культур, этот способ селекции остается для некоторых видов растений пока единственным.
Получение стабильно устойчивых каллусных линий — процесс длительный. Как правило, он включает следующие этапы:
1) Селекция начинается с получения достаточного количества каллусной массы из изолированных растительных эксплантов.
2) Этот каллус в дальнейшем используется для определения концентрации селективного фактора (построение дозовой кривой), при которой наблюдается одновременно рост каллусной ткани, и в то же время часть каллусных колоний погибает. Выбранная концентрация селективного фактора признается оптимальной и используется в дальнейших экспериментах.
3) На протяжении последующих 4—6 субкультивирований на селективной среде проверяется стабильность устойчивости полученных клонов, так как первично полученные на средах с селективными факторами колонии клеток могли возникнуть вследствие физиологической адаптации или определенного состояния дифференцировки клеток и не быть генетически устойчивыми.
4) Затем культуру каллуса переносят на среду без селективного фактора и субкультивируют еще 2—3 пассажа.
5) И только после повторного возвращения в селективные условия отбирают стабильные клоны, из которых пытаются получить растения-регенеранты.
*Однако работы, проведенные с получением растений, устойчивых к повышенным солям, а также к токсинам, выделенным из грибов—возбудителей болезней, показали, что устойчивость клетки и растения к исследуемому селективному фактору может совпадать и не совпадать.Прямая корреляция между устойчивостью растений и клеток in vitro отмечена лишь для низких температур, устойчивостью к гербицидам, высоким концентрациям алюминия и другим факторам.
Достигнуты положительные результаты по получению растений пшеницы, риса, картофеля, устойчивых к NaCI или Na2S04. Получены клетки, а из них растения моркови, которые синтезируют в 20 раз больше метионина, в 30 раз — триптофана, в 5 раз — лизина путем добавления в питательную среду токсичных аналогов аминокислот. Для картофеля получены растения, устойчивые к кольцевой гнили.
Доказано, что проведение селекции на клеточном уровне позволяет создавать новые формы растений в 2—4 раза быстрее по сравнению с традиционными способами селекции.
— Соматическая гибридизация
Слияние протопластов – своеобразный метод гибридизации, так называемая парасексуальная, или соматическая гибридизация. В отличие от обычной гибридизации, где сливаются половые клетки (гаметы), в качестве родительских при парасексуальной гибридизации используются диплоидные клетки растений. Внеядерные генетические детерминанты (цитоплазматическая наследственность) у большинства высших растений наследуются в половом процессе строго одноядерно и матерински.
Возможности соматической гибридизации:
– скрещивание филогенетически отдаленных видов растений (организмов), которые невозможно скрестить обычным половым путем;
– получение асимметричных гибридов, несущих генный набор одного из родителей наряду с несколькими хромосомами, органеллами или цитоплазмой другого;
– слияние трех и более клеток;
– получение гибридов, представляющих сумму генотипов родителей;
– перевод мутаций в гетерозиготное состояние, что позволяет получать жизнеспособные формы при слиянии протопластов, поскольку мутагенез довольно часто дает дефектное по морфогенезу растение;
– получение растений, гетерозиготных по внеядерным генам и др.
Парасексуальная гибридизация важна для анализа как ядерных генов, так и внеядерных геномов. Цитоплазматический геном кодирует ряд признаков – скорость фотосинтеза, устойчивость к патогенам, абиотическим факторам и т. д. Наличие косегрегация генов (признаки, контролирующие внеядерный геном, сегрегируют совместно) свидетельствует о физическом сцеплении генов.
Протопласты могут сливаться как попарно, так и в большем количестве. Многоядерные продукты слияния, как правило, разрушаются.
— Сомаклональная изменчивость
Обычно при регенерации растений в культуре тканей ожидают, что они генетически идентичны источнику. Это ожидание основывалось на том факте, что процесс полностью зависит от митоза, который по идее является консервативным при умножении клеток. Однако данная догма не совсем реальна.
Читайте также: Рогожка ткань что это такое для чего он нужен
В 1967 году были отмечены среди регенерантов растения, по габитусу (внешнему виду) отличающиеся от исходного, они получили название «сомаклоны».
Сомаклональная изменчивость определяется как генетически переносимая изменчивость, которую можно с частотой 10 -3 наблюдать у растений, регенерированных in vitro из эксплантов, клеток или каллусов.
Клетки в культуре in vitro отличаются по морфологии, по биохимическим свойствам, по физиологическому состоянию и генетически. Разнообразие (вариабельность) среди клеточных линий или растений-регенерантов называют сомаклональной вариабельностью.
Происхождение сомаклональной изменчивости. Существует много механизмов, которые объясняют происхождение СИ. Они в основном относятся к двум моделям: 1) предполагает, что СИ уже существует в соматических клетках Э, 2) что СИ образуется в результате культивирования.
Имеется несколько факторов, влияющих на появление изменчивости в растениях-регенерантах: изменения в первичных эксплантах до помещения их в культуру, природа первичного экспланта (тип экспланта: лист, междоузлие, сегмент побега, плоидность экспланта, его генотип), гетерогенность первичной клеточной популяции, продолжительность культивирования культуры тканей, влияние БАВ (цитокининов, гиббереллинов, ауксинов, антибиотиков и др. в-в) при росте каллуса или во время нового образования органов, мутагенная обработка или включение в среду токсических веществ: гербицидов, солей, токсинов, иногда обработка пониженными температурами.
Полиморфизм культивируемых клеток можно объяснить видовыми и возрастными особенностями, уровнем плоидности, влиянием состава питательной среды и условий культивирования, отсутствием коррелятивных связей. Последний фактор, ведущий к нарушению жесткой регуляции, существовавшей в целом растении, видимо, является основной причиной спонтанной изменчивости клеток in vitro .
Любой фрагмент растения представляет собой мозаику различных тканей, и в зависимости от того, какая ткань даст начало каллусу, возникшие даже из одинаковых эксплантов каллусы будут гетерогенными и отличающимися друг от друга. Одинаковых, в полном смысле, эксплантов в природе быть не может, следовательно, неоднородность исходного материала (видовая, возрастная, физиологическая) предопределяет разнокачественность клеток в культуре.
Физиологическая гетерогенность состоит в том, что клетки в популяции находятся в разном физиологическом состоянии, т. е. делятся, растут, стареют, погибают. Такая культура называется асинхронной. Заставить популяцию клеток высших растений проходить фазы клеточного цикла одновременно, т. е. синхронизировать их, почти невозможно. Потому что та часть клеток, которая способна в данный момент к делению, составляет 2–4%. Неблагоприятные условия (низкая температура, исключение важных компонентов питания), задерживающие деление, в какой-то степени способствуют накоплению числа клеток, готовых к делению. Более эффективны некоторые химические вещества, блокирующие определенные стадии подготовки к делению. В лучших случаях синхронизация может быть достигнута у 10–30% клеток, но при последующих делениях популяция опять быстро утрачивает синхронность.
Следует подчеркнуть, что физиологическая вариабельность клеток в суспензионной культуре меньше по сравнению с культурой каллусной ткани на агаре, что связано с более однородными условиями питания, аэрации и удаления токсических метаболитов из клеточного окружения в жидкой перемешиваемой среде.
Возможные механизмы изменчивости. Генетическая природа и механизм возникновения СИ пока слабо изучены, несмотря на интенсивность исследований.
Часто изменения связаны с количественным и структурным состоянием хромосом:
1) Кариотипические изменения.Даже клетки одной и той же ткани, выращиваемые в одном сосуде, могут значительно различаться между собой по хромосомным наборам (диплоидные, полиплоидные, анеуплоидные).
Причины генетической изменчивости многообразны: 1) нарушение коррелятивных связей при выделении первичного экспланта из растения, т. е. отсутствие организменного контроля; 2) действие компонентов среды; 3) влияние продуктов метаболизма, накапливающихся в среде; 4) гетерогенность исходного материала и селекция клеток определенного типа.
Обычно после 6 месяцев культивирования процент кариотипически измененных клеток повышается. Однако у некоторых растений (картофель, сорго) несмотря на ненормальность в строении листьев и всего габитуса растений, кариотип остался неизменным.
2) Скрытые изменения, связанные с хромосомными перестройками.
У многих растений отмечали делеции, инверсии, дупликации, кольцевые хромосомы, хромосомные мосты.
Такие хромосомные перестройки могут приводить к потере генетического материала, что сказывается на изменении фенотипа. Скрытые изменения могут приводить не только к потере генов и их функций, но также к экспрессии молчащих генов. Например, перестройка может уничтожить или выключить доминантный аллель, позволяя рецессивному гену проявиться в фенотипе. Такие крупные цитологические нарушения сопряжены с уменьшением фертильности растений-регенерантов.
3) Причинами изменений могут быть ядерные фрагментации и миграции ядерного материала; эндоредупликация, встречающаяся на протяжении инициации каллуса; нарушение митотических процессов.
Читайте также: Из какого ткани состоит кожица листа
4) Транспозоны.
Larkin (1985) предложил несколько механизмов, при помощи которых генная экспрессия наследуемо изменяется мобильными элементами: вставочный разрыв (элементы разрывают целостность структурных генов); регуляция гена мобильными элементами (элемент действует как промотор гена); активация мобильными элементами молчащих генов; перенесение уникальной последовательности генов в позиции с другой регуляцией; согласованный контроль генов (возможно имеется один автономный элемент, который регулирует экспрессию многочисленных неавтономных элементов и генов, на которых они размещаются); мобильный элемент как интрон (вырезанные элементы перемещаются с геном и действуют как интрон).
5) Амплификация генов. Специфические гены могут сами по себе увеличиваться (амплифицироваться) во время дифференциации или в ответ на средовые воздействия, т.е. число копий определенного гена на гаплоидный геном возрастает. Отмечали, например, у льна.
6) Скрытая элиминация вирусов. У растений имеются вирусы, которые не вызывают очевидных симптомов заболевания, но изменяют генотип растения.
7) Измененная экспрессия мультигенных блоков.
Условия культивирования вызывают хромосомные перестройки, и могут изменять регуляцию экспрессии блока генов таким образом, что ген, который прежде экспрессировался, может быть репрессирован, а прежде молчащий ген может начать экспрессироваться. Способность генерировать такие изменения в культуре может иметь важное значение для селекции. Так как некоторые ценные белки кодируются мультигенными блоками (например, глиадины, зеины, глютеины, амилазы).
8) Цитоплазматические изменения (наряду с ядерными). Известно, что изменения хлоропластных и митохондриальных генов происходит с высокой частотой.
Не нашли, что искали? Воспользуйтесь поиском:
Клеточная селекция. 1 Для проведения работ по клеточной селекции растений в условиях in vitro в качестве объекта исследования могут быть использованы каллусные
1 Для проведения работ по клеточной селекции растений в условиях in vitro в качестве объекта исследования могут быть использованы каллусные, суспензионные культуры или изолированные протопласты. Выбор объекта зависит от наличия разработанных технологий применительно к различным видам растений, а также от конечных целей исследования.
Каллусная ткань представляет собой легко доступный материал, который наиболее часто используют для клеточной селекции. Как правило, работу проводят на первичной или пересадочной каллусной ткани, которая не утрачивает способности к регенерации на протяжении ряда субкультивирований. Однако при работе с каллусными культурами многие исследователи отмечают существенные недостатки данного объекта: медленный рост ткани, неравноценное для всех клеток действие токсических веществ, которые применяются в качестве селективного фактора, а также потеря регенерационной способности в процессе культивирования каллусных клеток. Несомненно, проводить селекцию целесообразно на уровне одиночных клеток (суспензионная культура, протопласты). Однако для многих видов растений не разработаны эффективные технологии и способы культивирования одиночных клеток. Поэтому, несмотря на перечисленные выше недостатки использования каллусных культур, этот способ селекции остается для некоторых видов растений пока единственным.
Получение стабильно устойчивых линий — процесс длительный. Как правило, селекция начинается с получения достаточного количества каллусной массы из изолированных растительных эксплантов, использующейся в дальнейшем для определения концентрации селективного фактора (построение дозовой кривой), при которой наблюдается одновременно рост каллусной ткани, и в то же время часть каллусных колоний погибает. Выбранная концентрация селективного фактора признается оптимальной и используется в дальнейших экспериментах. Так как первично полученные на средах с селективными факторами колонии клеток могли возникнуть вследствие физиологической адаптации или определенного состояния дифференцировки клеток и не быть генетически устойчивыми, то в течение последующих 4—6 субкультивирований на селективной среде проверяется стабильность устойчивости полученных клонов. Затем их переносят на среду без селективного фактора и субкультивируют еще 2—3 пассажа. И только после повторного возвращения в селективные условия отбирают стабильные клоны, из которых пытаются получить растения-регенеранты. Однако работы, проведенные с получением растений, устойчивых к повышенным солям, а также к токсинам, выделенным из грибов—возбудителей болезней, показали, что устойчивость клетки и растения к исследуемому селективному фактору может совпадать и не совпадать. Прямая корреляция между устойчивостью растений и клеток in vitro отмечена лишь для низких температур, устойчивостью к гербицидам, высоким концентрациям алюминия и другим факторам. Большое число работ по культивированию каллуса, с целью получения нового селекционного материала, проведено на пшенице, ячмене, рисе, сорго, а также на картофеле, томатах, люцерне и, крайне редко, на древесных. Уже достигнуты первые положительные результаты по получению растений пшеницы, риса, картофеля, устойчивых к NaCl или Na2S04. Получены клетки, а из них растения моркови, которые синтезируют в 20 раз больше метионина, в 30 раз — триптофана, в 5 раз — лизина путем добавления в питательную среду токсичных аналогов аминокислот. Для картофеля получены растения, устойчивые к кольцевой гнили. Что касается древесных, то для них работы в этом направлении крайне редки и часто имеют поисковый характер. Таким образом, использование каллусной культуры в селекционных целях открывает огромные возможности в создании новых форм растений, несущих ценные признаки, необходимые для человечества. Наряду с перечисленными выше объектами (каллусная, суспензионная культура, изолированные протопласты), в качестве исходного материала для селекции могут быть использованы культуры соматических или андрогенных эмбриоидов, такие органогенные экспланты, как сегменты листьев или различные меристематические и стеблевые части растений, а также культура изолированных зародышей. Например, путем культивирования и селекции in vitro зародышей из семян получены растения ячменя, устойчивые к аналогам аминокислот, с улучшенным содержанием белка. Для картофеля разработан эффективный метод обработки побегов и черенков мутагеном, приводивший к получению химерных мутантов хлорофиллдефектности и антибиотикоустойчивости. При культивировании пыльников яровой пшеницы сорта Саратовская-29 и Московская-35 на питательных средах с повышенным содержанием солей хлорида натрия получены соматические эмбриоиды, а в дальнейшем растения-регенеранты, проявившие повышенную солеустойчивость (Беккужина, 1993).
Читайте также: Ткань полиэстер в нижнем новгороде
Таким образом, проведение селекции на клеточном уровне позволяет создавать новые формы растений в 2—4 раза быстрее по сравнению с традиционными способами селекции.
2 По сравнению с экспериментальным мутагенезом на уровне целых растений метод мутагенеза на уровне клеток имеет ряд преимуществ:
— экономится площадь, так как в одной чашке Петри диаметром 10 см можно культивировать 107 – 108 клеток, а для такого же количества растений необходима площадь свыше тысячи гектаров;
— мутантные признаки на уровне отдельных клеток проявляются довольно быстро;
— возможно получение новых типов мутаций, в том числе и биохимического характера;
— экономится время и трудозатраты на получение нового желаемого признака. Важным условием является также возможность получения гаплоидов у того или иного вида растений. В дальнейшую селекционную работу включаются только те генотипы, у которых мутации проявляются на уровне целого растения. Растения с измененными признаками, полученные в результате мутагенеза на клеточном уровне, называются вариантами (термин «мутант» используется тогда, когда мутация подтверждается генетическими или молекулярно-генетическими методами). Рекомендуются следующие обозначения: R0 – растения-регенеранты, полученные из соответствующих клеточных клонов, R, R2 и т.д. – первое и последующее поколения после самоопыления. Общая схема получения мутантных форм путем селекции на клеточном уровне состоит из нескольких этапов (рис. 17):
Измененные при мутагенной обработке клетки могут быть выделены в условиях культивирования in vitro путем прямого и непрямого отборов, а также при тестировании отдельных клеточных колоний. Прямой отбор состоит в добавлении к питательным средам отдельных компонентов, к которым обычные, неизмененные клетки не устойчивы. Непрямой отбор (негативная селекция) заключается в создании условий культивирования, при которых рост неизмененных клеток либо задерживается, либо эти клетки погибают (например, культивирование при низких или высоких температурах на средах с недостатком отдельных компонентов и т.д.). Существует ряд факторов, ограничивающих селекцию in vitro Многие хозяйственно важные признаки, такие, как урожайность, количество зерна, устойчивость к пестицидам и другие трудно или практически невозможно получить при культивировании in vitro поскольку они не проявляются на клеточном уровне.
Рис. 17. Схема получения мутантных форм путем клеточной селекции
Недостаточно также биохимических и молекулярных маркеров, которые коррелировали бы с этими признаками на уровне целых растений. Не все селектируемые признаки, проявляющиеся на уровне клеток, сохраняются на уровне растений — регенерантов. Тому несколько причин: некоторая часть изменений не затрагивает генетический аппарат клетки, поэтому не сохраняется у потомков; генетические изменения могут элиминироваться в про цессе дифференциации и мейоза; функция мутированного гена может быть ограничена состоянием дифференцируемых и культивируемых клеток; мутация одного гена может сопровождаться активацией различных генов, кодирующих изоферменты; часть генотипов неспособна регенерировать нормальные фертильные растения.
Дата добавления: 2015-07-14 ; просмотров: 1350 ; ЗАКАЗАТЬ НАПИСАНИЕ РАБОТЫ
- Свежие записи
- Балкон в многоквартирном доме: является ли он общедомовым имуществом?
- Штраф за остекление балкона в 2022: что это и как избежать наказания
- Штраф за мусор с балкона: сколько заплатить за выбрасывание окурков
- Оформление балконного окна: выбираем шторы из органзы
- Как выбрать идеальные шторы для маленькой кухни с балконом