Прибор для определения абсорбции тканей модель absorption test system

AC-Tester – прибор контроля состояния и оценки остаточного ресурса изоляции

Переносной прибор марки «AC-Tester» (Absorption Current Tester) предназначен для оценки технического состояния изоляции высоковольтного оборудования в режиме «off-line». «AC-Tester» может быть использован для определения параметров кабельных линий с бумажно-масляной изоляцией, с изоляцией из сшитого полиэтилена (PE/VPE), для контроля изоляции электрических машин и трансформаторов и т.д.

Для эффективной оценки технического состояния изоляции различного типа в приборе «AC-Tester» реализованы три диагностических подхода к определению абсорбционных характеристик изоляции, три взаимодополняющих метода.

1. Метод определения и анализа коэффициентов абсорбции и поляризации

Применяется для любого типа изоляции (зарядная характеристика). Проводится измерение величины зарядного тока изоляции при значениях времени в 15, 60 и 600 секунд. По значениям этих токов рассчитываются:

Коэффициент абсорбции: KABC = R60 / R15 (где R – сопротивления изоляции). Изоляция хорошего качества должна иметь коэффициент абсорбции в диапазоне от 1,3 до 1,8. Если значение коэффициента абсорбции меньше 1,3, то эксплуатировать оборудование с такой изоляцией опасно.
Коэффициент поляризации изоляции: KPOL = R600 / R60. Изоляция хорошего качества должна иметь коэффициент поляризации в диапазоне от 2 до 4. Если значение коэффициента поляризации меньше 1,5, то эксплуатировать оборудование с такой изоляцией также опасно.

Если представить высоковольтную изоляцию в виде нескольких слоев, имеющих активное и емкостное сопротивление, то расчетным коэффициентам KABC и KPOL можно придать понятный физический смысл. Ток через изоляцию должен с течением времени уменьшаться по мере заряда емкостей слоев. Чем больше изоляция увлажнена, имеет больше дефектов, тем меньше активное сопротивление цепи заряда, тем быстрее зарядятся емкости слоев.

2. Метод измерения возвратного напряжения, RVM-анализ

Применяется для бумажно-масляной изоляции. Это разрядная характеристика, метод вольтметра. Измерения проводятся дважды после заряда изоляции напряжениями 1 и 2 кВ. Пример кривых изменения возвратного напряжения показан на рисунке.

Чем хуже будет изоляция, тем меньше будет амплитудное значение возвратного напряжения, тем быстрее оно затухнет. Отсутствие линейности между кривыми при двух зарядных напряжениях 1 и 2 кВ также говорит о плохом качестве изоляции.

3. Метод измерения тока релаксации, IRC-анализ

Предназначен для диагностики изоляции из сшитого полиэтилена. Это метод измерения разрядного тока, метод амперметра. Проводится после предварительного заряда изоляции напряжением 1 кВ. Кривые разрядного тока в изоляции приведены на рисунке.

Первый график показывает изменение разрядного тока после отключения источника испытательного тока и разряда геометрической емкости кабельной линии. Хорошо видно, что такой график трудно поддается анализу, так как не имеет характерных точек.

На втором графике для того же сигнала по вертикальной оси отложено произведение величины разрядного тока на время от момента начала регистрации. С физической точки зрения площадь этой кривой пропорциональна величине заряда, накопленной в изоляции. При помощи этой кривой можно легко сравнивать между собой изоляцию нескольких объектов.

В соответствии с многослойной схемой замещения изоляции, чем раньше на графике будет наблюдаться пик, тем хуже состояние изоляции и больше ее загрязнение и увлажнение, тем меньшим остаточным ресурсом обладает изоляция контролируемого объекта.

Следует понимать, что само значение амплитуды пика на этом графике не несет большого физического смысла, обычно график следует рассматривать как безразмерный, сравнивая только времена достижения пика. Из двух одинаковых высоковольтных объектов худшим является тот, в котором амплитудное значение на графике достигается раньше. Аналогично можно говорить и о сравнении изоляции фаз одного объекта.

Микробиологический анализатор, ПО и тест-системы

Компактный полуавтоматический микробиологический анализатор, предназначенный для проведения идентификации и определения чувствительности микроорганизмов с помощью тест-систем Микро-Ла-Тест в формате 96-луночных планшетов и стрипов. Комплектуется ПО ErbaExpert.

Набор реагентов для определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам MIKROLATEST представляет собой отдельные антибиотики в формате стрипов для определения МПК методом двойных серийных разведений.

Стандартизация бактериальных суспензий чрезвычайно важна при проведении идентификации микроорганизмов, определении их чувствительности к антибактериальным препаратам и при решениидругих задач.

Микротитровальные 96-луночные пластинки с 1,2 или трехрядными вертикальными стрипами для постановки 8, 16 или 24 биохимических реакций. Лунки содержат дегидратированные субстраты.

MIKROLATEST® SensiLaTest MIC — тест-системы для определения антибиотикочувствительности микроорганизмов с принципом работы, основанном на методе серийных двойных микроразведений с определением минимальной ингибирующей концентрации (MIC).

Новое поколение анализатора в комплексе «Рабочее место микробиолога, эпидемиолога, химиотерапевта», пришедший на смену Multiskan Ascent. П олуавтоматическая система, предназначенная для идентификации микроорганизмов и определения антибиотикочувствительности, а также для проведения кинетических измерений с построением кривых микробного роста.

Автоматизированное рабочее место микробиолога, эпидемиолога и химиотерапевта (АРМ) на базе планшетных фотометров Multiskan FC, Multiskan-Ascent и iEMS-Reader (Thermo Fisher Scientific Inc., ранее LabSystem Oy и ThermoElectron Oy).

Выбираем микробиологический анализатор и тест-системы для идентификации и определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам

Клиническая микробиология

Микробиология включает в себя много направлений, в числе которых промышленная, санитарная, клиническая и др. Каждая отрасль имеет свою специфику и работает с определенными микроорганизмами. Предметом изучения клинической микробиологии преимущественно являются бактерии и грибы, имеющие клиническое значение. Основным объектом исследования здесь служит биологический материал, полученный от больного или здорового человека. Цель – определить этиологию заболевания.

Читайте также: Как сделать новогоднее украшение из ткани

При этом можно выделить две основных задачи клинической микробиологии:

выделить и провести идентификацию микроорганизма;
определить химиотерапевтические препараты, эффективные в отношении данного микроорганизма.

Бактериологические анализаторы: цена, виды, возможности

Для начала рассмотрим варианты решения первой задачи клинической микробиологии.

Первым этапом является этап выделения чистой культуры микроорганизма с помощью посева на специальные культуральные среды, можно приступать к ее идентификации.

Чтобы определить род/вид микроорганизма и понять, насколько он интересен для последующего исследования, можно воспользоваться одним из следующих вариантов:

MALDI TOF масс-спектрометр;
автоматический микробиологический анализатор;
полуавтоматический анализатор для микробиологии;
бесприборные тест-сиcтемы для биохимической идентификации;
питательные среды, приготовленные вручную («пестрый ряд»).

Тест-системы для идентификации микроорганизмов различаются по спектру определяемых микроорганизмов, по скорости определения и количеству дополнительных реагентов. Например, у производителя Erba Lachema (Чехия) существуют следующие виды ID панелей: ЭНТЕРОтест 24 N, ЭНТЕРОтест 16, ЭНТЕРО-Скрин, НЕФЕРМтест 24, СТАФИтест 16, СТАФИтест 24, СТРЕПТОтест 16, СТРЕПТОтест 24, НЕЙССЕРИЯтест, АНАЭРОтест 23, ЭН–КОККУС тест, КАНДИДАтест 21, КАНДИДАСкрин, есть и панели для быстрой идентификации за 4 часа: ЭНТЕРО–Рапид 24, КОЛИтест, URE — HPтест.

Данные тест-системы могут быть считаны визуально или при помощи бактериологических анализаторов.

Цена тест-систем, как и цена микробиологического анализатора, может существенно варьироваться от производителя к производителю.

При выборе в качестве анализатора для идентификации масс-спектрометра MALDI-TOF, можно в дальнейшем существенно сэкономить на расходных материалах и проводить исследование с высокой скоростью, однако единоразово придется заплатить достаточно высокую цену. Данный подход оправдан при наличии бюджета и высоких потоках исследований.

При ограниченном финансировании можно выбрать полуавтоматический анализатор, например Multiskan FC (Thermofisher Scientific) или ErbaScan (Erba Lachema) и работать на достаточно бюджетных панелях MIKROLATEST (Erba Lahema), данный комплекс обеспечивает выполнение исследований при любых потоках и рассчитан на бюджетные лаборатории. При этом в комплект поставки включено удобное программное обеспечение «Микроб-2», позволяющее осуществлять мониторинг микробного пейзажа и антибиотикорезистентности микроорганизмов, выделенных в лаборатории. Оно дает возможность использовать данные не только сотрудникам лаборатории, но и другим смежным специалистам – эпидемиологу и химиотерапевту.

Если рассматривать автоматический бактериологический анализатор, осуществляющий идентификацию и определение чувствительности, то нужно быть готовым, что несмотря на все бесспорные преимущества автоматизации, цена прибора может колебаться в районе десятка миллионов рублей и стоимость тест-систем, в основном, не бюджетная.

Представленные на рынке микробиологические анализаторы различаются не только ценой и степенью автоматизации, но также производительностью, количеством идентифицируемых штаммов, качеством программного обеспечения и экспертной системы, удобством использования и др.

Анализатор для видовой идентификации микроорганизмов обычно осуществляет еще одну задачу клинической микробиологии (кроме масс-спектрометра) – определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам.

Анализаторы и приборы микробиологические, а также тест-системы, используемые для определения чувствительности микроорганизмов, можно разбить на группы:

автоматические анализаторы;
полуавтоматические анализаторы;
визуальные тесты на чувствительность к антибиотикам;
диски для определения чувствительности к антибиотикам;
градиентные полоски с антибиотиками типа Е-тест.

Перед определением чувствительности готовят суспензию заданной концентрации в единицах МакФарланда (в соответствии с инструкцией). Для данного этапа используют прибор для измерения мутности: нефелометр или турбидиметр, определяющие соответственно рассеяние или поглощение света частицами взвеси при определенной длине волны. Erba Lachema производит простой в использовании прибор — измеритель мутности DENSI-LA-METER.

Определение чувствительности микроорганизмов: диски, тест-системы, стрипы с антибиотиками

Поскольку определение чувствительности с помощью тест-систем для автоматического анализатора обычно достаточно дорогое исследование, многие микробиологические лаборатории в России пользуются дисками с антибиотиками, стоимость которых в разы меньше.

Диско-диффузионный метод является универсальным для широкого спектра антимикробных препаратов и не требует специального оборудования, однако, данный метод основан на анализе бактериального роста при пограничных концентрациях и не дает представления об истинной концентрации АБП, подавляющей рост микроорганизма.

Определить минимальную ингибирующую концентрацию (МИК, МПК) позволяет метод серийных двойных разведений, который считается референтным методом определения чувствительности микроорганизмов.

Примером коммерческих тест-систем, основанных на методе серийных двойных разведений, могут служить системы Sensi-La-Test MIC (Erba Lachema). В каждом планшете содержится 12 антибиотиков в 8 концентрациях. Наборы выпускаются для различных групп микроорганизмов: грамотрицательных, грамположительных, неферментирующих, микроорганизмов, изолированных при инфекциях мочевыводящих путей и стафилококков.

Отдельного внимания заслуживает уникальный для российского рынка продукт – стрипы с антибиотиками MIKROLATEST для определения МПК. Каждый стрип содержит 1 антибиотик в 7 концентрациях и контроль роста культуры. Стрипы можно использовать по одному или комбинировать на планшете, создавая конфигурацию для конкретного пациента или конфигурацию, наиболее соответствующую потребностям ЛПУ.

Выбор реагентики для определения чувствительности связан прежде всего с утвержденными руководствами по определению чувствительности в РФ, а также не маловажную роль играют такие факторы как: цена, потоки исследований, имеющееся оборудование.

Реакция абсорбции — элюции при определении групп системы АВО в волосах

Реакция абсорбции — элюции при определении групп системы АВО в волосах. Стегнова Т.В. Суд.-мед. эксперт., 1977, № 2, с. 34-37.

В отрезках длиной 4—5 мм, взятых из различных участков стержня волос головы мужчин и женщин разного возраста, определяли группы системы АВО реакцией абсорбции — элюции. Разработаны оптимальные параметры указанной реакции для исследования волос.

Читайте также: Узи мягких тканей в чите

ABSORPTION-ELUTION TEST IN АВО GROUPING OF HAIR

Absorption-elution test (AET) gives the best results in the ABO grouping of hair when the antibodies are eluted directly into the erythrocyte suspension at +40°C. The temperature of +56°C proved to be unsuitable because of a combination of a certain weakening of the a and lectine anti-H elution with a significant decreasing of erythrocyte agglutinability. Optimal AET parameters have been worked out.

библиографическое описание:
Реакция абсорбции — элюции при определении групп системы АВО в волосах / Стегнова Т.В. // Судебно-медицинская экспертиза. — М., 1977. — №2. — С. 34-37.

Для обнаружения группоспецифических антигенов в объектах судебно-медицинской экспертизы широко применяют реакции абсорбции— элюции (РАЭ) и «смешанной агглютинации» (РСА).

При исследовании, например, волос и костей использование РСА в силу особенностей тканей, содержащих антигены, оказывается технически менее целесообразным, чем применение РАЭ. Мы исследовали волосы головы мужчин и женщин разного возраста. Опыты проводили с отрезками волос 4—5 мм, взятыми из различных участков волосяного стержня.

Поскольку большинство авторов рекомендуют элюировать абсорбированные антитела в физиологический раствор при 56°С, а затем уже выявлять их соответствующими стандартными эритроцитами, первоначальные опыты проводили именно таким способом. Получили малоудовлетворительные результаты: если и удавалось обнаруживать элюированные антитела, то агглютинация даже при минимальном объеме физиологического раствора была слабой, что особенно касалось антител а и лектина анти-Н. Объяснение этого мы видим в следующем. Абсорбционная способность антигенов А и 0 (Н) в волосах, очевидно, невелика, в связи с чем извлекается малое количество абсорбированных антител, концентрация которых к тому же уменьшается благодаря объему жидкости, куда они попадают (физиологический раствор + среда взвеси эритроцитов). Поэтому антитела не улавливаются при помощи реакции агглютинации. Это подтверждается данными, полученными в отношении волос группы В: высокая абсорбционная способность антигена В, как правило, обеспечивает выявление антител, даже извлеченных в физиологический раствор.

Пришлось перейти к элюции антител непосредственно во взвесь эритроцитов. При сроках абсорбции 3 и 20 ч и элюции антител при температуре 56°С в волосах группы В соответствующий антиген обнаруживали достаточно отчетливо, с волосами же групп А и 0 результаты были весьма слабыми или отрицательными.

Исход РАЭ, несомненно, должен зависеть от количества извлеченных антител, с одной стороны, и от агглютинабельности стандартных эритроцитов, с другой.

Оптимальная температура внешней среды для эритроцитов, равно как и для других клеточных элементов тканей человека, 37°С. Повышение ее не оказывает пагубного влияния только до известных пределов. Karle и соавт. (1970), исследуя мембраны эритроцитов человека при температурных воздействиях, установили, что в пределах 37—42°С эритроциты не претерпевают изменений в форме и способности к агглютинации. Изучая влияние температуры на агглютинацию эритроцитов М и N, М.А. Бронникова (1942) отметила, что при температуре 50°С возникают повреждения эритроцитов — выбухания вещества, которые затем отшнуровываются в виде мелких образований округлой формы. Наряду с этим наблюдалась утрата эритроцитами групп М и N способности к агглютинации. При охлаждении препаратов эта способность восстанавливалась лишь частично.

Ввиду того что малоудовлетворительные результаты РАЭ при температуре 56°С могли, в частности, зависеть от снижения агглютинабельности эритроцитов, мы провели специальные эксперименты. Сыворотки о и р по 2 серии и экстракт анти-Н разводили физиологическим раствором до предельного титра (кратные разведения). Каждый реагент во всех разведениях испытывали эритроцитами двух доноров. Эритроциты групп А и В применяли в виде 1%, а эритроциты группы 0 — 2% взвеси в физиологическом растворе ив 1% растворе бычьего альбумина. При добавлении к сывороткам эритроциты прогревали 25 мин при температуре 40, 45 и 56°С. Смеси с эритроцитами групп А и В центрифугировали 4 мин при 1500 об/мин, а с эритроцитами группы 0 —2 мин при 1000 об/мин. Пробирки четырехкратно встряхивали и учитывали результаты реакции агглютинации макро- и микроскопически сразу после центрифугирования и после пребывания смесей при комнатной температуре в течение 3 ч 1 .

Полученные результаты представлены в табл. 1.

Прогревание эритроцитов групп А и В при температуре 40°С не изменило степени их агглютинабельности, при температуре 45°С агглютинационная способность была ослаблена в 2 раза. При температуре 56°С агглютинабельность эритроцитов снижалась в 8—12 раз, причем имел место частичный, а в некоторых случаях и полный гемолиз эритроцитов. Агглютинационная способность эритроцитов группы 0 при температуре 40 и 45°С оказалась одинаковой и степень ее не отличалась от первоначальной (комнатная температура), а при 56°С снижалась в 4—8 раз. Спустя 3 ч агглютинабельность эритроцитов несколько повышалась, но была слабее исходной в 4 раза в группах А и В и в 2 раза в группе 0. Гемолиз усиливался.

Агглютинабельность эритроцитов при различном температурном воздействии

Примечание. «NaCl» — взвесь эр итроцитов сделана в физиологическом растворе, «альбу мин» — взвесь эритроцитов приготовлена в 1% растворе бычьего альбумина.

Читайте также: Шуйские ткани в новосибирске

Из этих опытов следует, что пользоваться температурой 56°С для элюции антител непосредственно во взвесь эритроцитов нецелесообразно.

Требовалось снизить температуру, но предварительно необходимо было выяснить, в какой мере то или иное температурное воздействие обеспечивает при исследовании химически обработанных и раздавленных волос и волос, подвергшихся только раздавливанию под прессом, нарушение комплексов антиген — антитело и элюцию антител. Антитела элюировали в минимальный объем физиологического раствора в пробирках при различных температурных режимах (40, 45 и 56°С), добавляя затем малые капли взвеси эритроцитов. В табл. 2 приведены результаты опытов с химически обработанными волосами, так как эта обработка не только не препятствовала элюции достаточного количества антител, но, наоборот, улучшала исход РАЭ.

Если волосы относились к группе В, то антитела β элюировались во всех исследованных случаях, причем сила агглютинации варьировала от + + + до + —. В отношении волос, принадлежащих к группе А, получены иные данные: агглютинация была значительно слабее (+ —, +), причем наблюдались и отрицательные результаты. Примерно то же имело место и при исследовании волос группы 0 лектином анти-Н. Наибольшее число отрицательных реакций наблюдалось в группе А. Изменение температурного режима (40, 45, 56°С) не влияло сколько-нибудь заметно на элюцию антител при исследовании волос группы В. Что касается волос группы А и 0, то существенных различий между элюцией антител при 40 и 45°С не отмечено: температурный режим 56°С оказался наименее благоприятным, особенно при наличии волос у лиц, относящихся к секреторному типу se (преимущественно это касалось волос группы А).

Сочетая результаты изучения влияния температурного режима на степень элюции абсорбированных антител а, р и лектина анти-Н и на агглютинабельность эритроцитов, мы пришли к выводу, что для элюирования антител во взвесь эритроцитов в процессе исследования волос при помощи РАЭ температура 56°С не пригодна и что наиболее целесообразно проводить элюцию при температуре 40°.

Степень элюции абсорбированных антител в физиологический раствор при разных температурных режимах

Обозначения. 1 Цифры обозначают число образцов волос. 2. + + + , + +, +, + -, — + , — ₊ агглютинация по убывающей степени выраженности, — отсутствие агглютинации.

Приводим разработанную нами методику исследования. Очищение волос от загрязнений путем промывания их теплой водой с мылом и последующее споласкивание водой без мыла. Обработка волос в течение 15—20 мин смесью, состоящей из двух объемов 15% раствора перекиси водорода и одного объема 5% водного раствора аммиака 2 . Раздавливание волос между двумя металлическими пластинками под прессом. Добавление к ним на предметных стеклах по 1—2 капле сывороток а, р и экстракта анти-Н из семян ракитника сидячелистного с титром 1 :256 (допустим титр 1 : 128) _s Абсорбция 3 ч при температуре 4—8°С (препараты должны находиться во влажных камерах). Отмывание волос от несвязанных антител в 5 порциях охражденного физиологического раствора. Добавление к волосам (соответственно примененным для абсорбции реагентам) 0,5% взвеси эритроцитов в 1% растворе бычьего альбумина или в сыворотке человека группы АВ 1,5% концентрации. Элюция антител непосредственно во взвесь эритроцитов в течение 25 мин при температуре 40°С. Микроскопический учет результатов РАЭ сначала без покровных стекол, а затем под ними после пребывания препаратов в течение 1 ч при комнатной температуре (в случае слабо выраженной агглютинации продолжительность наблюдения до 3 ч).

Изложенная методика была апробирована на экспериментальном материале — волосах головы 58 мужчин и женщин разного возраста с заранее установленными группой крови и секреторным типом (табл. 3).

Приведенная методика, как правило, обеспечивала обнаружение антигенов системы АВО в различных частях стержня волос головы лиц обоих секреторных типов Se и se.

Результаты определения групповой принадлежности волос

Примечание. Обозначения те же, что в табл. 2. + — макроскопически видимая агглютинация.

В нашем материале встретился один образец волос группы А, типа Se, в котором не был выявлен антиген А. Повышение температуры элюции до 56°С не дало результата. Тогда мы применили гемагглютинирующую гетероиммунную кроличью сыворотку анти-А. Это позволило отчетливо обнаружить антиген А. Исследование волос иммунными сыворотками продолжается.

Полученные нами данные позволяют полагать, что для выявления антигенов системы АВО и в других биологических объектах (кровь, выделения и пр.) элюирование абсорбированных антител во взвесь эритроцитов целесообразно проводить при температуре 40°С, а не при 56°С. Отрицательное воздействие на результаты РАЭ элюции при 56°С менее заметно при исследовании объектов с сильно выраженными антигенами, но все же оно существует и иногда может значительно ухудшать исход реакции абсорбции — элюции.

1 Максимальный срок наблюдения агглютинации при РАЭ.

2 Кисин М.В., Стегнова Т.В. «Суд.-мед. эксперт.», 1973, № 1, с. 22—26.