Травма вызывает целый комплекс различных изменений в травмированном глазу. Хирургическими методами можно восстановить анатомическую целость глазного яблока, устранить повреждения внутренних оболочек и сред, удалить внедрившиеся инородные тела, однако реактивный ответ на травму глаза включает, помимо анатомических изменений, целый комплекс глубоких сосудистых и нейрогенных повреждений. Устранение этих изменений требует адекватного медикаментозного лечения, а в ряде случаев использования и других методов консервативного лечения.
Лечение механических травм глаза производят с учетом имеющихся травматических изменений, а также осложнений, нередко развивающихся после проникающих ранений глазного яблока. Анализ современного медикаментозного лечения, применяемого в офтальмотравматологии, позволяет выделить следующие основные направления:
• репаративная терапия, направленная на стимуляцию регенерации поврежденных тканей;
• противовоспалительная терапия, направленная на лечение травматического увеита;
• антибактериальная терапия, обеспечивающая профилактику и лечение раневой инфекции;
• антигеморрагическая терапия, стимулирующая рассасывание внутриглазных кровоизлияний и обеспечивающая профилактику их рецидива;
• гипотензивная терапия, обеспечивающая нормализацию ВГД при его повышении;
• терапия гипотонических состояний, обеспечивающая повышение ВГД при его посттравматическом снижении.
Репаративная терапия травм глаза
Нарушение процессов регенерации при механической и ожоговой травме приводит к замедленному формированию рубца в месте проникающей травмы или контузионного разрыва роговицы и склеры, возникновению эрозий роговицы, торпидных язв, десцеметоцеле, перфорации оболочек, внутриглазной инфекции. Для улучшения регенерации и восстановления угнетенных обменных процессов предложено много различных препаратов, преимущественно биологического происхождения: рыбий жир, облепиховое масло, эвкалиптовая эмульсия или мазь, сок каланхоэ, экстракт алоэ, спермацет в различных лекарственных формах.
В настоящее время изучен ряд биологически активных веществ, повышающих скорость эпителизации роговицы. К ним относятся эпидермальный и мезодермальный факторы роста, фактор роста фибробластов, ретиноиды, фибронектин. Нами предложен новый репаративный стимулятор — адгелон, представляющий раствор низкомолекулярного сывороточного полипептида и влияющий на клеточную адгезию.
С этой же целью употребляют различные субстанции, создающие биологическое покрытие на поврежденных наружных оболочках, в первую очередь на роговице, и препятствующие ее травматизации при экскурсии век, а также стимулирующие репаративные процессы: актовегин, солкосерил, корнегель и др.
Большое значение для стимуляции репаративных процессов имеют препараты, воздействующие на механизмы внутриклеточного обмена. Это антиоксиданты (эмоксипин, дибунол, токоферол) и стабилизаторы клеточных мембран (тауфон).
В отделе травматологии в комплекс обязательного медикаментозного лечения травм глаза включены желе актовегин (солкосерил) и тауфон. Указанные препараты применяются местно в виде инстилляций.
Редактор: Искандер Милевски. Дата обновления публикации: 18.3.2021
Препараты для регенерации роговицы (кератопротекторы)
В случае заболеваний роговой оболочки глаз с поражением ее поверхности, травмах, а также ожогах глаза, необходима ускоренная регенерация тканей с улучшением обменных процессов. Стимуляцию регенераторных процессов обеспечивают вещества, выделяемые из тканей животных, такие как, депротеинизированный диализат крови телят или гликозаминогликаны, а также аналоги различных нуклеотидов и витаминов.
При этом, необходимо отметить, что эффективность применяемого также гидроксиэтиламиноаденина гидробромида не имеет научно обоснованных доказательств.
Фармакологическое действие
Стимуляция регенеративных процессов в тканях при применении кератопротекторов осуществляется за счет повышения миграции эпителиальных клеток на раневые поверхности с неповрежденных участков, а также увеличения митотического действия базальных клеток. Гликозаминогликаны при этом, не только активизируют процессы регенерации, но и оказывают значительно противовоспалительное действие.
Читайте также: Вто изделий из натуральных тканей
Фармакокинетика
Механизмы абсорбции, распределения или элиминации данных препаратов не подлежит изучению традицонными фармакокинетическими методами (к примеру, радиоактивной маркировкой и пр.), так как они включают низкомолекулярные компоненты, которые в норме присутствуют в организмах любых млекопитающих.
Показания к применению
Стимуляторы регенерации роговицы назначаются в терапии следующих заболеваний:
- Механические поражения роговицы и конъюнктивы (травмы, эрозии, послеоперационные рубцы);
- Ожоги роговицы и конъюнктивы: термические, лучевые (возникающие под воздействием ультрафиолетового, рентгеновского, а также прочих видов коротковолновых излучений), химические (возникающие под воздействием кислот, щелочей);
- Кератиты (бактериальные, вирусные, грибковые) в стадии эпитализации, как средство комбинированного лечения, наряду с антибактериальными, противовирусными, противогрибковыми средствами;
- Дистрофия роговицы различной природы (включая нейропаралитический и лагофтальмический кератиты, «сухой» кератоконъюнктивит, буллезную кератопатию).
Кроме того, кератопротекторы применяют для сокращения времени адаптации к контактным линзам (мягким и жестким), улучшения их переносимости. Рекомендованы они и после проведения диагностических исследований с применением контактных линз (ретиноскопии, гониоскопии и пр.).
Побочные эффекты
Кератопротекторы не вызывают серьезных системных побочных эффектов и, как правило, имеют хорошую переносимость. Среди местных реакции, можно отметить кратковременное слабое жжение и аллергические реакции.
Противопоказания
Противопоказанием к применению данных препаратов должна служить индивидуальная непереносимость их компонентов, а также онкологические заболевания и сахарный диабет, хотя то касается только гликозаминогликанов.
Лекарственные взаимодействия
Кератопротекторы нежелательно сочетать с антинуклеозидными производными, имеющими виростатическое действие (к примеру, естественные метаболиты депротеинизированного диализата крови молочных телят снижают противовирусный эффект ацикловира).
Заполните форму и получите скидку 15 % на диагностику!
Репаративные процессы тканей глаза
Изучение процессов репаративной регенерации до сих пор остается актуальным в биологии и медицине [2, 5]. Особенно это важно для биологических тканей, в которых регенерация очень низка или практически отсутствует, в частности, в офтальмологии ‒ в ходе манипуляции для укрепления наружной стенки глаза при ее дистрофических процессах [3, 9, 10].
В предварительных исследованиях эффективности применения различных аллоплантов и имплантатов выявлено их значительное модулирующее влияние на поврежденные ткани [7]. Использование измельченных в порошок биологических материалов в виде крупнодисперсной взвеси уменьшает травматичность методики за счет минимизации разрезов слизистой оболочки, однако репаративная регенерация возникает также только на поверхности склеры в зоне ее введения [5, 6].
Известно, что измельчение до наноразмерной структуры вещества без изменения его химического состава изменяет в сторону увеличения его физические свойства: проникающую способность, гидрофильность и т.д. [4]. Однако изучение влияния имплантации биологических материалов, измельченных до наноразмерного уровня, на динамику репаративных процессов в соединительнотканных структурах передней стенки глаза в настоящее время не проводилось.
Цель исследования – изучить закономерности репаративной регенерации соединительнотканных структур передней стенки глаза в ответ на имплантацию нанодисперсной плаценты.
Материалы и методы исследования
Экспериментальные исследования выполнены на самцах белых крыс трехмесячного возраста с массой тела 220–300 г. В первой группе животным (опыт) под слизистую на склеру глаза под местной анестезией имплантировали биологический контейнер (БК) размерами 3,0 ± 0,5×1,0 ± 0,2 мм. Биоконтейнер представлял собой отрезок сосуда амниотической оболочки человека и был наполнен 0,05 ± 0,01 г порошком нанодисперсной плаценты, полученной методом механоактивации [1]. Порошок состоял [8] из отдельных частиц размером от 200 до 500 нм, сформированных зернами размером от 40 до 100 нм. Частицы в свою очередь образовывали слабосвязанные агломераты размером от 2 до 10 мкм. Во второй опытной группе животным под слизистую на склеру глаза под местной анестезией имплантировали биологический контейнер, заполненный порошком из крупноизмельченной плаценты с размерами частиц более 45 мкм, в аналогичной дозе. Третья группа животных (контроль) состояла из ложнооперированных крыс, которым под анестезией проводили разрез, аналогичный таковому в ходе имплантации.
Читайте также: Кашемир ткань все цвета
Экспериментальные исследования проведены с соблюдением «Правил проведения работ с использованием экспериментальных животных». Забой производили под тиопенталовым наркозом путем декапитации. Изучены группы животных к концу 3, 7, 30 и 60 суток после манипуляций (по 5 животных в каждой группе). Фиксацию осуществляли в 10 % растворе нейтрального формалина, заливали в парафин. Исследование структуры порошка измельченной плаценты человека и поверхности гистологических срезов зоны оперативного вмешательства проводились на сканирующей зондовой лаборатории Ntegra (NT-MDT) в прерывисто-контактной методике на воздухе после предварительной химической очистки от парафина. Аналогичным образом изучена структурная организация коллагеновых волокон в участках предварительно проведенных манипуляций. Для общего морфологического анализа препараты окрашивали гематоксилин-эозином. Изучение пролиферативной активности соединительнотканного окружения трансплантируемого материала выявляли иммуногистохимически с определением экспрессии Ki-67 ПАП методом.
Результаты исследования и их обсуждение
В ходе проведенных экспериментальных исследований выявлено, что постимплантационный период у животных протекал без видимых осложнений: отсутствовали признаки отторжения и вторичной инфекции.
В ранние сроки (3–7-е сутки) после имплантации БК во всех рассмотренных случаях имплантат сохранялся в обеих опытных группах. Отмечалась умеренная воспалительная инфильтрация как оболочки БК, представленной стенкой сосуда, так и окружающей конъюнктивы и субконъюнктивальной основы. Это проявлялось в лимфоцитарно-моноцитарных клеточных ответах, умеренной инфильтрации мононуклеарами тканей прилежащей склеры и конъюнктивы, появлении отдельных лейкоцитов в стенке и в содержимом БК. В контроле же проявления клеточных реакций были значительно менее выражены. Прилегающий участок склеры реципиента в первой опытной группе характеризовался разрыхлением стромы, между коллагеновыми волокнами которой видны нейтрофилы и лимфоциты, а также мелкие полихромно окрашенные пылевидные частицы, аналогичные наблюдаемым при исследовании гистологического среза БК. При этом отмечено сохранение наноразмерной структуры измельченной плаценты 40–100 нм. Разволокнение поверхностных слоев склеры во второй опытной группе было незначительное, их инфильтрация под БК не отмечалась. В контроле склера была интактна.
Иммуногистохимическое исследование с определением экспрессии Ki-67 ПАП методом показало выраженную пролиферативную активность клеток соединительно-тканной основы слизистой оболочки глаза вокруг БК (рис. 1, 2) в первой контрольной группе, умеренновыраженную пролиферативную активность в зоне имплантации БК с крупноизмельченной плацентой (рис. 3) и низкую пролиферативную активность в зоне разреза слизистой и подслизистой оболочек в опытной группе (рис. 4).
Через 30 суток после проведенной манипуляции как у контрольных, так и опытных животных зона внешней поверхности раневого повреждения подвергалась полной реэпителизации. В контроле на месте хирургического вмешательства сформировался рубец в виде ограниченного участка плотной волокнистой соединительной ткани с сетевидно распределенными коллагеновыми волокнами. Лейкоцитарно-клеточные реакции в зоне и непосредственно вокруг повреждения у контрольных животных отсутствовали. У животных опытных групп в зоне имплантации наблюдались остатки стенки БК в виде небольших скоплений участков эластических и коллагеновых волокон с наличием лимфоцитарно-клеточного ответа в них. У животных обеих опытных групп в непосредственном окружении БК наблюдались значительные клеточные скопления, включающие лимфоциты, пролиферирующие и зрелые клетки фибробластического ряда, эпителиоидные клетки.
Читайте также: Ткань полиэстер описание характеристика
При этом фибробласты формировали тонкую соединительную капсулу вокруг БК с множеством гемокапиляров и наличием эпителиоидных клеток, однако в первой опытной группе при имплантации БК с нанодисперной плацентой процессы клеточных реакций, а также формирование новых капилляров было более выражено. Кроме того, отмечалась пролиферативная активность клеток фибробластического ряда в прилежащей к БК склере реципиента, в ее поверхностных и средних слоях, а также формирование в них гемокапилляров, что практически отсутствовало во второй группе животных с имплантацией БК с крупноизмельченной плацентой.
Рис. 1. Обзорное изображение экспрессии Ki-67 в зоне имплантации биоконтейнера в 1-й опытной группе на 7-е сутки после вмешательства. Вторые антитела, меченные пероксидазой. Ув. х50: 1 – участок соединительной ткани с признаками высокой пролиферативной активности, 2 – остатки биоконтейнера; А – слизистая оболочка; Б – подслизистая оболочка
Рис. 2. Экспрессия Ki-67 в зоне, непосредственно прилежащей к имплантируемому биоконтейнеру в 1-й опытной группе на 7-е сутки после вмешательства. Вторые антитела, меченные пероксидазой. Ув. х200: 1 – пролиферативно активные клетки
Рис. 3. Экспрессия Ki-67 в зоне, непосредственно прилежащей к имплантируемому биоконтейнеру во 2-й опытной группе на 7-е сутки после вмешательства. Вторые антитела, меченные пероксидазой. Ув. х200: 1 – пролиферативно активные клетки
Рис. 4. Экспрессия Ki-67 в зоне механической травмы в контрольной группе на 7-ые сутки после вмешательства. Вторые антитела, меченные пероксидазой. Ув. х200: 1 – пролиферативно активные клетки
Через 60 суток в области разреза у контрольных животных участок хирургического вмешательства выявлялся в виде ограниченной зоны рубцовой ткани конъюнктивы. В обеих опытных группах БК практически полностью рассасывался. Вокруг донорских структур в первой опытной группе образовалась капсула, внутренние слои которой состояли из эпителиоидных клеток и крупных макрофагов. Наружные слои капсулы состояли из вновь образованной рыхлой соединительной ткани с множеством вновь сформированных сосудов, активных фибробластов. Новообразованная соединительная ткань по плотности приближалась к отдаленной от зоны имплантации. Макромолекулярная организация вновь образованных коллагеновых волокон указывала на достаточную степень их морфологической зрелости. Волокнистая организация межклеточного вещества склеры приобретала упорядоченный характер. При имплантации БК с крупноизмельченной плацентой данные процессы проявлялись в значительно меньшей степени. Толщина склеры во второй опытной группе была на 23 %, а в контроле на 31 % меньше по отношению к первой опытной группе.
Таким образом, нанодисперсная плацента, по всей видимости, за счет приобретения ею новых физических свойств вследствие механоактивации, таких как повышенная проницаемость и гидрофильность, значительно усиливает процессы пролиферации в соединительнотканных структурах реципиента в зоне ее введения. Кроме того, повышаются репаративные свойства склеральной ткани при ее изначально низкой пролиферативной активности.
Васильев Ю.Г., д.м.н., профессор кафедры гистологии, эмбриологии и цитологии, ГБОУ ВПО «Ижевская государственная медицинская академия» Минздрава России, г. Ижевск;
Селякин С.П., д.м.н., профессор кафедры анатомии человека, ГБОУ ВПО «Ижевская государственная медицинская академия» Минздрава России, г. Ижевск.
- Свежие записи
- Балкон в многоквартирном доме: является ли он общедомовым имуществом?
- Штраф за остекление балкона в 2022: что это и как избежать наказания
- Штраф за мусор с балкона: сколько заплатить за выбрасывание окурков
- Оформление балконного окна: выбираем шторы из органзы
- Как выбрать идеальные шторы для маленькой кухни с балконом