XIII Международная студенческая научная конференция Студенческий научный форум — 2021
МЕТОДИКА ВЫДЕЛЕНИЯ ДНК ИЗ ХВОИ ДРЕВЕСНЫХ РАСТЕНИЙ
Введение. Одним из особо важных событий XX века в области генетики можно по истине считать определение ДНК (дезоксирибонуклеиновой кислоты). Так с момента открытия структуры и свойств ДНК технологии её выделения непрерывно совершенствуются и модифицируются [3].
В настоящее время существуют различные методы, позволяющие выделять ДНК из растительной и животной ткани, грибов, бактерий, вирусов и т. д. Этап выделения преследует основную задачу, а именно получение очищенных препаратов ДНК с целью дальнейшего использования для решения широкого спектра вопросов, например таких как проведение обратной транскрипции, детектирование накопления продуктов амплификации методом ПЦР, клонирование, секвенс, гибридизация, синтез ДНК и другие [3].
С познанием организации и изменчивости генетического материала связаны разработка новых методов лесовосстановления и улучшения растений. Анализ генофонда и сохранение древесных видов лесных растений является ключевой целью работы лесной генетики. Одним из самых больших направлений работы лесной генетики является изучение гомо- и гетерозиготности, а также анализ полиморфизма ДНК. [2].
В результате анализа репродуктивного материала в базу данных вносится информация о генетических характеристиках контрольных образцов семян достоверно известного происхождения на основе ДНК-анализа. Формируется уникальный генетический код образцов семян, затем отслеживают в какие районы и области высеваются эти семена, потом отбираются сеянцы, которые также подвергаются генетическому исследованию с целью контроля качества посадочного материала [2].
Материалы и методы. При выделении ДНК из растительной ткани растений важным фактором является эффективное разрушение клеточной стенки, которая состоит из целлюлозы и других химических компонентов, таких как полисахариды, полифенолы, белки и липиды, которые действуют как загрязняющие вещества во время выделения ДНК. Многие методы, используемые для этого, приводят к сильной фрагментации ДНК по причине гидродинамических разрывов в цепи [1].
Основная цель различных методов выделения ДНК – разработка относительно быстрого, недорогого и последовательного метода выделения для извлечения высококачественной ДНК с лучшим выходом. Как правило, образцы листьев или листоподобных органов содержат большое количество полифенолов, дубильных веществ и полисахаридов. Основным принципом выделения ДНК является разрушение клеточной стенки, клеточной мембраны и ядерной мембраны для высвобождения высокоинтактной ДНК в раствор с последующим осаждением ДНК и удалением загрязняющих биомолекул, таких как белки, полисахариды, липиды, фенолы [4].
Клетки растений заключают себя в сложную полисахаридную клеточную стенку, основной составляющей которой является целлюлоза, которая имеет кристаллическую природу из-за цепочечной структуры и межмолекулярных водородных связей. Его можно ослабить, чтобы открыть стенку ячеек, применив механическую силу, действующую во время измельчения вместе с буфером CTAB (бромистого цетилтриметиламмония). Методика с использованием СТАВ впервые разработана Мюррэм и Томпсоном в 1980 году, и в последствие была опубликована Вангером в 1987 году [4; 5].
СТАВ-метод позволяет получать препараты растительной ДНК с чистотой, достаточной для ПЦР, рестрикционного и гибридизационного анализа. Данный метод хорошо растворяет мембраны клеток. Кроме того, его применение позволяет разделить ДНК и полисахариды, поскольку они отличаются по растворимости в присутствии этого поверхностно-активного вещества[1]. На рисунке 1 показано каким образом при взаимодействии клеточных мембран с буфером, содержащим СТАВ, детергент захватывает липиды и белки, освобождая ДНК [5].
Рисунок 1 – Разрушение клеточной мембраны и выделение ДНК
В общем виде схема выделения ДНК из хвои древесных растений методом СТАВ выглядит следующим образом:
1. В начале работы необходимо обработать спиртом бокс и все используемые поверхности, далее взять необходимое количество пробирок с крышками и установить на планшет, подписать их.
2. Поместить в бокс всю необходимую посуду, реактивы, расходные
материалы. Приготовленный СТАВ 3% (с указанной датой приготовления), спирт (95% этанол). Включить ультрафиолет на 15 мин. Пустые пробирки на 2 мл (подписать порядковые номера 1, 2, 3…) поместить в термостат и прогреть их при t = 65˚С.
3. СТАВ 3% подогреть на магнитной мешалке с подогревом до t = 65˚С.
4. Подготовка образцов. Хвою необходимо нарезать ножницами, предварительно протёртыми 95% этанолом и прокаленными зажигалкой. Резать на стекле или на фильтровальной бумаге. Полученный образец ткани поместить в ступку и добавить 1000 мкл прогретого до 65˚со СТАВ-буфера (3%), растереть до однородной кашицы.
5. Кашицу перелить в нагретые в термостате пробирки, после поместить их обратно в термостат. После наполнения последней пробирки подождать 2-3 мин, вынуть пробирки в красный планшет и остудить до комнатной температуры.
6. Переставить планшет с пробирками в бокс, открыть и добавить в каждую по 800 мкл смеси изоамилового спирта с хлороформом. Работать необходимо в маске. Затем закрыть пробирки крышкой и 3 мин перемешивать.
7. Переместить пробирки в центрифугу и центрифугировать 4 мин при t = 21º C .
8. Переставить в планшет, после перенести планшет в бокс и отобрать супернатант не задевая нижнюю и среднюю фазы. После необходимо добавить холодный изопропанол. Закрыть пробирки.
9. Встряхнуть вручную 3 мин и далее центрифугировать 4 мин при Max оборотах (21130 rcf при t = 21º C ).
10. Вынуть из центрифуги и крайне аккуратно и в то же время интенсивно вылить изопропиловый спирт, следим за осадком. Открытые пробирки переворнуть на фильтровальную бумагу для удаления лишних капель.
11. Переставить в планшет без крышки, добавить по 1000 мкл 95% этилового спирта и каждую пробирку встряхнуть на вортексе до отделения осадка и далее центрифугировать 3 мин при Max оборотах (21130 rcf при t = 21º C ).После аккуратно слить спирт.
12. Снова добавить 1000 мкл 95% этилового спирта и после встряхнуть на вортексе, 3 мин центрифугируем при Max оборотах (21130 rcf при t = 21º C ), слить спирт и перевернуть на фильтровальную бумагу для удаления спирта.
13. Подсушить пробирки в термостате 15 мин при t = 55º C . После сушки необходимо смотреть, чтобы все осадки были внизу пробирки.
14. Высушенные осадки залить dH 2 O в объёме 40 мкл и встряхнуть пробирки на вортексе до полного растворения высушенного осадка.
15. Пробирки поместить в термостат на 40 мин – 1 час при t = 40º C и 1000 об., пробирки желательно встряхивать на вортексе каждые 15 мин и после того, как время закончится, ещё раз встряхнуть и открутить на вортексе.
Выводы. СТАВ-метод хорошо подходит для выделения и очистки ДНК из хвои древесных растений, так как позволяет удалить большое количество полифенолов, дубильных веществ и полисахаридов, которые отрицательно влияют на чистоту ДНК и, следовательно, на ее качество.
В заключении стоит отметить, что методики выделения ДНК зависит от многих факторов и основывается исходя из определённых критериев. Поэтому выбор определенного метода выделения ДНК до сих пор остается трудной задачей, от решения которой зависит получение правильного и надежного результата. Неверно выбранный метод выделения ДНК или его неверное осуществление могут привести либо к получению загрязненной ДНК, либо непригодной для исследования или её потеря.
Читайте также: Кукла из ткани в старину
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ
1. . Каюмов, А.Р. Практикум по молекулярной генетике. Учебно-методическое пособие / А.Р. Каюмов, О.А. Гимадутдинов // КФУ. – Казань. – 2016. – С.36.
Выделение молекулы ДНК из объектов растительного происхождения
В данной работе описана подробная методика выделения молекулы нуклеиновой кислоты.
Скачать:
Предварительный просмотр:
Выделение молекулы ДНК из объектов растительного и животного происхождения.
1.1 Открытие ДНК и нуклеопротеидная теория наследственности
1.2 Изучение химического состава и структуры ДНК
1.3 Современное представление о структуре ДНК
Вопросы наследственности, передачи отдельных признаков от родителей потомству, самовоспроизводства живых организмов на Земле издавна волновали человечество. В разные эпохи различными учеными выдвигалось множество теорий, своеобразно объясняющих подобные процессы. Наиболее древняя из них датирована VI-V вв. до н. э. Это так называемое энцефаломиелоидное учение древнегреческого врача и натурфилософа Алкмеона.
Но истинные ответы на эти вопросы человечество смогло найти лишь спустя несколько тысяч лет, с появлением и развитием генетики — науки о наследственности и изменчивости организмов. Официальной датой рождения генетики считают 1900 г., когда трое ученых — голландец Х. де Фриз, немец К. Коренс и австриец Э. Чермак — независимо друг от друга переоткрыли законы Грегора Менделя о наследовании генетических признаков.
С развитием точных наук и техники менялись методы и уровни изучения живой материи. Наряду с классической генетикой, появились такие важные направления, как цитогенетика, генетика человека, генетика микроорганизмов, биохимическая, эволюционная генетика, космическая генетика, молекулярная генетика и многое др.
Наследственность, гены, ДНК… Эти слова уже давно перестали быть научными терминами, вошли в повседневную жизнь и знакомы теперь каждому старшекласснику. Но никакой ДНК большинство из нас никогда не видело, и можно ли вообще ее выделить и увидеть в лабораторных условиях? Все вышесказанное определило тему исследования.
Цель работы: выделить молекулу ДНК из объектов животного и растительного происхождения и доказать ее качественный состав.
♦ Изучить литературу по данному вопросу;
- Выявить объекты, в которых содержание молекул ДНК максимально;
- Изучить состав молекулы ДНК;
- Выделить молекулу ДНК в лабораторных условиях;
- Изучить некоторые химические свойства ДНК;
- Доказать качественный состав молекулы ДНК.
Объект исследования : объекты животного и растительного происхождения.
Предмет исследования : молекула ДНК, содержащаяся в объектах растительного и животного происхождения
Гипотеза: если известно, что молекула ДНК содержится во всех живых организмах, то ее можно выделить в лабораторных условиях.
В соответствии с задачами исследования были использованы методы систематизации теоретического материала, исследовательские методы, обобщение накопленного материала.
Практическая значимость исследования состоит в том, что полученную информацию по результатам исследовательской работы можно использовать на факультативных занятиях и элективных курсах по химии.
1.1 Открытие ДНК и нуклеопротеидная теория наследственности
В настоящее время в сознании многих людей такие термины, как ДНК и генетика, неразделимы. Однако так было не всегда.
В 1868 г. швейцарский химик Ф. Мишер обнаружил в клеточных ядрах, изолированных из гноя, а позже из спермиев лосося вещество, которое он назвал «нуклеином» (от лат. nucleus — ядро). Впоследствии Р. Альтманн (1889 г.) сообщил, что выделенный Ф. Мишером «нуклеин» состоит из двух фракций — белковой и нуклеиновых кислот).
Достаточно длительное время считали, что функцию передачи наследственной информации выполняют белки, т. к. нуклеиновые кислоты относительно просты по химической структуре и проявляют «поразительное единообразие» у разных видов растений и животных. Этому заблуждению способствовало предположение Э. Вильсона (сделанное им в 1925 г.) о том, что функциональную роль в хроматине играют белки, а не нуклеиновые кислоты. В 1928 г. крупнейший советский биолог Н. К. Кольцов (1872—1940) разрабатывает гипотезу молекулярного строения и матричной репродукции хромосом, которая легла в основу главнейших принципов и положений современной молекулярной биологии и генетики. Тем не менее он считает, что хромосома — это гигантская биологическая молекула, обладающая свойством самоудвоения, и что все признаки и свойства организма предопределены строением белка и взаимодействием его молекул, а не ДНК.
Иначе говоря, в конце XIX — начале XX вв. в генетике распространилось ошибочное мнение о том, что материальным носителем генетической информации являются белки. О значении нуклеиновых кислот в данных процессах, а равно и о функциях этих химических соединений в организме ничего не было известно. Поэтому этот период в истории изучения ДНК можно смело назвать нуклеопротеидным.
- Изучение химического состава и структуры ДНК
Если основная функция ДНК для многих ученых была понятна, то химическое строение и, в особенности, трехмерная структура нуклеиновых кислот представлялась еще недостаточно ясной.
С момента открытия Миллером в 1868 г. «нуклеина» прошло немало времени. Основные сведения по химическому составу были изложены А. Косселем, биохимиком, работавшим на рубеже XIX-XX вв.
Он установил, что нуклеиновая кислота состоит из четырех азотистых оснований, сахара и фосфорной кислоты. Азотистые основания были представлены двумя пуриновыми (аденин, гуанин) и двумя пиримидиновыми (цитозин и урацил) соединениями.
В 20-х гг. минувшего столетия П. Левеном и У. Джонсом в эту схему были внесены важные уточнения. Ими было обнаружено, что нуклеиновые кислоты имеют две разновидности: РНК и ДНК, различные по химическому строению. РНК, или рибонуклеиновая кислота, содержит пятиуглеродный сахар рибозу, а в ДНК присутствует дезоксирибоза. Наконец, ДНК не содержит урацила, как это полагал А. Коссель, вместо него имеется тимин. Кроме того, установлено, что азотистое основание, сахар и остатки фосфорной кислоты образуют соединение, названное нуклеотидом. В свою очередь, нуклеотиды образуют с помощью фосфодиэфирных связей некое подобие цепочки.
В 1924 г. немецкий химик Р. Фельген предложил гистохимический способ окраски ДНК животных, растений и бактерий. Основу методики составлял реактив Шиффа, который окрашивал ДНК в красно-фиолетовый цвет. С помощью реакции Фельгена ученые установили, что ДНК содержится преимущественно в ядре клетки, а РНК — в цитоплазме.
До 1950 г. среди генетиков и биохимиков господствовала тетрануклеотидная теория Ф. А. Левина. Согласно этой теории, все нуклеиновые кислоты — это монотонные макромолекулы, представляющие собою единообразное повторение четырех азотистых оснований — тетрануклеотидов. При этом полярные соотношения аденина, гуанина, цитозина и тимина представлялись как приблизительно равные. Ошибочность этой теории заключалась в том, что структуру ДНК понимали как элементарное химическое соединение, придавая ему линейный характер. Наличие вторичных и третичных структур у ДНК не учитывалось. Это привело к тому, что долгое время ученые считали, что ДНК не способна выполнить функцию носителя информации.
Читайте также: Типы секреции эпителиальной ткани
Эту теорию опроверг Э. Чаргафф. В 1948 г. Эрвин Чаргафф и Хочкисс применили для количественной оценки компонентов нуклеиновой кислоты тогда еще новый метод хроматографии на бумаге. Анализируя таким образом различные образцы ДНК от животных, растений и человека, ученые обнаружили, что точного количественного соответствия азотистых оснований ни в одном из случаев не наблюдалось. Напротив, в зависимости от биологического происхождения ДНК, состав молекулы будет различен. Следовательно, обнаружилось, что ДНК отнюдь не монотонная макромолекула. Обобщая данные своих исследований, Э. Чаргафф в 1949 г. сформулировал правило эквивалентности, которое вошло в историю генетики как правило Чаргаффа. Оно гласит: количественные отношения гуанина всегда равны содержанию цитозина, а содержание аденина соответствует содержание тимина. Математически это можно записать так:
В 1952 г. на основании работ Э. Чаргаффа и Хочкисса была сформулирована теория, объясняющая, каким образом ДНК содержит в себе генетическую информацию. Основное положение этой теории звучит так: «Генетическая информация определяется специфической последовательностью четырех нуклеотидных оснований в полинуклеотидной цепи.
Следует отметить, что установленные опытным путем количественные соотношения азотистых оснований в молекуле ДНК, выраженные в правиле Чаргаффа, не случайны. Отечественные генетики А. С. Спирин и А. Н. Белозерский пришли к выводу, что зависимость содержания гуанин-цитозиновых пар определяется филогенетическими (т. е. сложившимися в процессе эволюции) связями между организациями различной видовой принадлежности.
В 1912 г. отец и сын Брегги изобрели метод рентгеновской кристаллографии, основанный на том, что пучок параллельных рентгеновских лучей, падающих на регулярное скопление атомов, образует так называемую дифракционную картину. Дифракционная картина зависит главным образом от атомной массы атомов и их пространственного расположения. В 40-х гг. Астбюри использовал данный метод для определения пространственной структуры ДНК. На основании полученных рентгенограмм автор предположил, что биополимер ДНК представляет собой стопку из уложенных один над другим нуклеотидов. При этом нуклеотиды представлялись им в виде плоских дисков.
Астбюри оставил работу по дальнейшему изучению структуры ДНК. Исследования в начале 50-х гг. по структуре ДНК продолжили три группы ученых. Первую группу возглавил известный в то время своими работами по расшифровке вторичной структуры белков Лайнус Полинг. Вторая группа работала под руководством английского биофизика, члена Лондонского королевского общества Мориса Уилкинса, и, наконец, третью группу представляли Джеймс Уотсон и Френсис Крик.
Первыми представила свою модель в 1953 г. группа Л. Полинга. Однако она не получила всеобщего признания.
Сотрудникам Уилкинса удалось получить очень четкие рентгенограммы ДНК, на которых отчетливо было видно, что молекула нуклеиновой кислоты состоит из двух нитей, и, в частности, подтвердилась гипотеза Астбюри о межнуклеотидном расстоянии, равном 0, 34 нм
Одну из таких рентгенограмм ДНК, полученной в лаборатории М. Уилкинса, о публиковал журнал Nаture. На эту публикацию обратили внимание Д. Уотсон и Ф. Крик. Анализируя опубликованную рентгенограмму, они дополнили свои предположения и в апреле 1953 г. опубликовали собственную модель пространственной структуры ДНК, названную впоследствии их именами. Основные положения вторичной структуры ДНК, по Уотсону и Крику, сводятся к следующему:
1) Молекула ДНК представляет собой двойную спираль диаметром 2 нм.
2) Вдоль оси молекулы соседние пары оснований располагаются на расстоянии 0, 34 нм одна от другой. Полный оборот спирали приходится на 3, 4 нм, т. е. на 10 пар оснований.
Придавая молекуле ДНК форму спирали, Уотсон и Крик исходили из того, что последовательность нуклеотидов в цепи отражает генетическую информацию. Из этого следует, что любая произвольная последовательность оснований вдоль полинуклеотидных цепей ДНК должна соответствовать ее молекулярной структуре. Определенные трудности представляло то обстоятельство, что размеры пуринового кольца были больше, чем пиримидинового. Поэтому, чтобы спираль на всем протяжении имела постоянный диаметр, пуриновое кольцо в одной цепи должно быть расположено строго напротив пиримидинового в другой цепи. Так родился постулат о взаимной комплементарности нуклеотидов. Из этого постулата следует, что аденин (А) образует комплементарные связи только с тимином (Т), а гуанин (Г) — только с цитозином (Ц).
Правило комплементарности нуклеотидов взаимосвязано и подтверждается правилами Чаргаффа о эквивалентности. Однако основное значение открытия комплементарного спаривания заключается в признании ДНК самокоплементарной молекулой, т. е. генетическая информация записана в полинуклеотидной цепи в виде определенной последовательности четырех азотистых оснований, тогда каждая молекула ДНК несет два полных набора такой информации. Из этого следует, что обе полинуклеотидные цепочки антипараллельны друг другу.
В настоящее время модель ДНК Уотсона и Крика получила всеобщее признание мирового сообщества ученых. В 1962 г. Френсису Крику, Джеймсу Уотсону и Морису Уилкинсу за установление молекулярной структуры нуклеиновых кислот и их роли в передаче генетической информации в живой материи присуждена Нобелевская премия по генетике.
Однако этим исследования ДНК не ограничились. Вскоре выяснилось, что образуемые между двумя полинуклеотидными цепочками водородные связи можно разорвать при помощи нагревания. В результате повышения температуры до 94 град. в структуре ДНК наблюдался переход от спиральной формы к клубку. Такое явление было названо денатурацией ДНК.
В 1960 г. был открыт обратный процесс — восстановления разрушенных водородных связей и реставрации двойной спирали. Данное явление было названо ренатурацией.
Эти открытия полностью подтвердили высказанную еще в 1953 г. Уотсоном и Криком гипотезу о механизме самоудвоения (репликации) ДНК. По их мнению, репликация ДНК происходит путем разрыва водородных связей между двумя полинуклеотидными цепочками.
Разделение и разматывание молекулы начинается с одного конца спирали и продолжается по направлению к другому. Одновременно с разрывом цепочек происходит процесс синтеза новых полинуклеотидов. Результатом этой гипотезы стал сформулированный авторами постулат полуконсервативного характера репликации ДНК. То есть прежняя полинуклеотидная цепочка является как бы шаблоном для синтеза новой.
Значительный вклад в понимание механизмов самоудвоения молекулы ДНК внес Артур Корнберг. Он открыл фермент, который катализирует синтез полинуклеотидной цепочки. Этот фермент Корнберг назвал ДНК-полимеразой. В 1956 г. Корнберг сообщил, что ему удалось синтезировать в пробирке in vitro молекулу ДНК.
Эксперимент Корнберга показал, что ДНК используется непосредственно в качестве матрицы, без синтеза каких-либо других посредников, что полностью согласовывалось с предположениями Уотсона и Крика о репликации ДНК.
В 1969 г. удалось синтезировать ген комплементарной последовательности транспортной РНК.
1.3 Современное представление о структуре ДНК
Работы М. Уилкинса, Д. Уотсона и Ф. Крика, Э. Чаргаффа и многих других ученых заложили фундамент в понимание процессов наследственности, а именно — структуры и биологической роли ДНК в передаче генетической информации.
Читайте также: Какие изделия можно сшить из шерстяных тканей а постельное
Наука не стоит на месте, и в настоящее время внесены значительные дополнения и коррективы в представления о строении ДНК, разработанные в середине ХХ в. Уотсоном и Криком. Без изменения этих данных история изучения ДНК была бы неполной и незаконченной.
Прежде всего, установлено, что ДНК обладает полиморфизмом, т. е. способностью молекулы принимать различные конфигурации. На данный момент описано шесть таких форм. В-форма имеет стандартную структуру, соответствующую модели Уотсона-Крика. Это основной тип ДНК. А-форма представляет собой структуру, схожую для РНК-ДНК дуплексов. Она обнаружена в среде с высокой концентрацией ионов К и Nа и низким содержанием влаги. С-форма менее спирализованная, чем В-форма, т. е. имеет меньше нуклеотидов на один оборот спирали, чем остальные разновидности. Д- и Е-формы — крайние варианты С-формы имеют наименьшее число пар оснований на виток — 8 или 7,5. Они обнаружены только в молекулах ДНК, не содержащих гуанина. Z-форма представляет собой спираль с чередованием лево- и правозакрученности. В ДНК человека имеются участки, которые потенциально способны переходить в Z-форму. В 1993 г. установили, что в организме человека существуют условия, которые стабилизируют Z-форму. Установлено, что некоторые из конфигураций ДНК могут переходить друг в друга: А — В; Z — В.
Ученые полагают, что взаимные переходы А- и В-форм регулируют работу генов.
Исследования, направленные на поиск материального носителя наследственности, определили собой рождение новой науки — молекулярной генетики.
История изучения одной молекулы перевернула прежние представления о наследственности и передаче генетических признаков из поколения в поколение.
Методом проб и ошибок была установлена важнейшая роль ДНК в переносе наследственной информации. Отброшены ошибочные теории о том, что генетическую роль в организме выполняют белки, отвергнута бесперспективная и упрощенная тетрануклеотидная схема строения нуклеиновых кислот.
В начале 50-х гг. Д. Уотсоном и Ф. Криком разработана модель строения молекулы ДНК, разъясняющая, как происходит копирование генетического материала. Вскрыты механизмы этого процесса.
Значительные достижения молекулярной генетики обеспечили прочную основу для таких перспективных направлений, как генная инженерная и биотехнология, планирование генов и многоклеточных организмов.
2.1 Выделение молекулы ДНК из объектов растительного и животного происхождения.
ДНК, как известно, есть в каждой клетке, а значит, выделить её можно из любой ткани — даже из костей животных, чешуи рыб или древесины, где клеток не так уж много по сравнению с объёмом внеклеточного вещества.
Во всех тканях организма как животного, так и растения, ДНК, как правило, одинакова. Отличаются эти ткани тем, что в одних из них помимо вещества наследственности больше почти ничего нет (молоки селёдки), а в других, таких, как костная ткань, содержание ДНК относительно невелико. Кроме того, существуют ткани, в клетках которых имеется удвоенный набор хромосом (к тетраплоидным относятся, в частности, клетки печени), а потому и ДНК в них в два раза больше, чем во всех остальных.
Мы, старались выбрать для работы ткань, в которой мало межклеточного вещества и много самих клеток. Причём желательно, чтобы ткань легко распадалась на эти составляющие, а клетки не были перегружены белками (как мышечные), липидами (как жировые) или полисахаридами (как клетки мозга).
Для работы мы выбрали из объектов растительного происхождения зелёный горошек и лук, из объектов животного происхождения гусиную печенку, селёдочные молоки.
Выбранные продукты (около 100 мл) мы положили в миксер, добавив 1/8 чайной ложки соли и 200 мл холодной воды. Взбивали в течение 15 секунд. Миксер «сварил» вам горохово-клеточный суп.
В миксере ткань, из которой мы собирались добыть вещество наследственности, распадается на отдельные клетки. Немного соли нужно добавить в раствор для того, чтобы клетки не полопались раньше времени: давление внутреннего содержимого на клеточную мембрану изнутри уравновесили давлением соляного раствора снаружи.
Процедили смесь через фильтр, ситечко или кусок капрона В полученную мякоть добавили 1/6 от её количества (2 столовые ложки) жидкого моющего средства для посуды и хорошо размешали. Оставили на 5-10 минут.
В данном случае фильтрация нужна для того, чтобы механически удалить из клеточной суспензии всевозможные примеси, в том числе, крупные куски.
Средство для мытья посуды годится и для того, чтобы наделать больших дырок в липидной мембране как самой клетки, так и её ядра.
В результате такой обработки всё клеточное содержимое вывалится наружу и окажется в растворе, который сделается при этом очень вязким, тягучим и существенно более прозрачным, чем была клеточная суспензия.
Разлили жидкость по пробиркам или другим стеклянным посудинам, чтобы в каждой было заполнено не больше трети объёма.
В каждую пробирку долили чуть-чуть раствора для контактных линз (добавив таблетку для удаления белковых отложений) и осторожно встряхивали, переворачивая и наклоняя пробирку (если трясти слишком рьяно, то разломается ДНК).
Далее наклонив пробирку медленно вливали в неё немного этилового спирта, чтобы он образовал слой поверх гороховой смеси. Льем, пока спирта и смеси не окажется поровну. ДНК всплывёт наверх в виде хлопьев.
Заметим сразу — заменить этиловый спирт водкой или духами нельзя: если концентрация спирта будет низкой и упадёт при смешивании с водной фазой до 60-65%, ДНК в кристаллическое состояние не перейдёт. Отчасти именно по этой причине наливать спирт в пробирку с ДНК-содержащей смесью следует осторожно, наслаивая его сверху. Тогда нижние слои спирта частично смешаются с раствором ДНК, начнётся процесс кристаллизации нуклеиновых кислот, и они всплывут на поверхность (где спирт более концентрированный) в виде хлопьев.
Если же налить спирт сверху не получится и всё безнадёжно перемешается, то при малом количестве этанола у вас вообще ничего не получится, а при большом начнёт кристаллизоваться не только ДНК: в осадок выпадут и остатки белков, и кое-что ещё из исходного содержимого клеток.
Чистые кристаллы ДНК похожи на клубки спутанных нитей, но не надо забывать, что вы видите именно кристаллы вещества, а не его макромолекулы, и сказать по их внешнему виду, какие гены содержит выделенная вами нуклеиновая кислота, конечно, невозможно. Чтобы узнать это, придётся снова растворять ДНК. Впрочем, «прочесть» последовательность нуклеотидов в лабораторных условиях, увы, невозможно: для этого нужны не только специальные приборы, но и дорогие реактивы.
Однако если вы уже хорошо рассмотрели кристаллы и они успели подсохнуть, можете понаблюдать за тем, как ДНК растворяется. Она в начале набухает, становясь похожей на студенистую медузу, и лишь спустя несколько дней раствор делается однородным. Процесс можно ускорить, если пробирку почаще встряхивать.
- Свежие записи
- Балкон в многоквартирном доме: является ли он общедомовым имуществом?
- Штраф за остекление балкона в 2022: что это и как избежать наказания
- Штраф за мусор с балкона: сколько заплатить за выбрасывание окурков
- Оформление балконного окна: выбираем шторы из органзы
- Как выбрать идеальные шторы для маленькой кухни с балконом